• 中国科技论文统计源期刊
  • 中国科技核心期刊
  • 中国高校优秀期刊
  • 安徽省优秀科技期刊

留言板

尊敬的读者、作者、审稿人, 关于本刊的投稿、审稿、编辑和出版的任何问题, 您可以本页添加留言。我们将尽快给您答复。谢谢您的支持!

姓名
邮箱
手机号码
标题
留言内容
验证码

不同玻璃化冷冻载体对人卵巢组织冷冻效果的影响

郑轶 周平

引用本文:
Citation:

不同玻璃化冷冻载体对人卵巢组织冷冻效果的影响

    作者简介: 郑轶(1986-), 女, 住院医师.
    通讯作者: 周平, 副主任医师.zhoup-325@yahoo.com.cn
  • 中图分类号: R322.65

Effect of different vitrification carriers on the freezing human ovarian tissue

    Corresponding author: ZHOU Ping, 副主任医师.zhoup-325@yahoo.com.cn
  • CLC number: R322.65

  • 摘要: 目的: 比较不同的玻璃化冷冻载体对人卵巢组织冷冻效果的影响,为人卵巢组织玻璃化冷冻方案的选择提供理论基础和实验参考依据.方法: 预处理人卵巢皮质切成10 mm×1 mm×1 mm大小,随机分为新鲜组(A组)、针浸润玻璃化冷冻组(B组)、表面玻璃化冷冻组(C组)和直接覆盖玻璃化冷冻组(D组).A组直接予以固定、组织切片及HE染色;B、C、D 3组采用不同玻璃化冷冻载体冷冻后,投入液氮保存2个月,采用快速复温法解冻后予以固定、切片及染色.行形态学分析,通过计算各组卵巢组织切片中正常形态始基卵泡率,比较各组冷冻效果.结果: 4组共计数809个始基卵泡,其中正常形态始基卵泡率分别为:A组96.12%,B组88.14%,C 组80.00%,D组81.25%.行玻璃化冷冻的3组卵巢组织正常形态始基卵泡率均明显小于A组(P< 0.01);而B组、C组和D组正常形态始基卵泡率差异均无统计学意义(P >0.05).结论: 玻璃化冷冻后人卵巢组织正常形态始基卵泡率较新鲜组织下降,但仍能较好地保存人类卵巢组织,可用于人类卵巢组织的冷冻保存.
  • [1] Meirow D,Nugent D.The effects of radiotherapy and chemotherapy on female reproduction[J].Hum Reprod Update,2001,7(6):535-543.
    [2] Jeruss JS,Woodruff TK.Preservation of fertility in patients with cancer[J].N Engl J Med,2009,360(9):902-911.
    [3] Aubard Y,Poirot C,Piver P,et al.Are there indications for ovarian tissue cryopreservation? [J].Fertil Steril,2001,76(2):414-415.
    [4] Schover LR,Brey K,Lichtin A,et al.Knowledge and experience regarding cancer,infertility,and sperm banking in younger male survivors[J].J Clin Oncol,2002,20(7):1880-1889.
    [5] Gougeon A.Dynamics of follicular growth in the human:a model from preliminary results[J].Human Reproduction,1986,1(2):81-87.
    [6] Wang Y,Xiao Z,Li L,et al.Novel needle immersed vitrification:a practical and convenient method with potential advantages in mouse and human ovarian tissue cryopreservation[J].Hum Reprod,2008,23(10):2256-2265.
    [7] Bleyer WA.The impact of childhood cancer on the United States and the world[J].CA Cancer J Clin,1990,40(6):355-367.
    [8] Wallace WH,Thomson AB,Saran Fetal.Predicting age at ovarian failure following radiation to afield that indludes the ovaries[J].Int J Radiat Biol Phys,2005,62(3):738-744.
    [9] Oktay K,Karlikaya GG,Aydin BA.Ovarian cryopreservation and transplantation basic aspects[J].Mol Cell Tixloainol,2000,169(1/2):105-108.
    [10] Oktay K,Buyuk E,Veeck L,et al.Embryo development after heterotopic transplantation of cryopreserved ovarian tissue[J].Lancet,2004,363(9412):837-840.
    [11] Meirow D,Levron J,Eldar-Geva T,et al.Pregnancy after transplantation of cryopreserved ovarian tissue in a patient with ovarian failure after chemotherapy[J].N Engl J Med,2005,353(3):318-321.
    [12] Sánchez-Serrano M,Crespo J,Mirabet V,et al.Twins born after transplantation of ovarian cortical tissue and oocyte vitrification[J].Fertil Steril,2010,93(1):268.
    [13] Lass A,Silye IT,Abrants IX,et al.Follicular density in ovarian biopsy of infertile women:a novel method to assess ovarian reserve[J].Human Reprod,1997,12(5):1028-1031.
    [14] Sadeu JC,Cortvrindt R,Ron-El R,et al.Morphological and ultrastructural evaluation of cultured frozen-thawed human fetal ovarian tissue[J].Fertil Steril,2006,85(Suppl 1):1130-1141.
    [15] Vajta G,Nagy ZP.Are programmable freezers still needed in the embryo laboratory review on vitrification [J].Reprod Biomod Online,2006,12(6):779-796.
    [16] Kagawa N,Silber S,Kuwayama M.Successful vitrification of bovine and human ovarian tissue[J].Reprod Biomed Online,2009,18(4):568-577.
    [17] Chen SU,Chien CL,Wu MY,et al.Novel direct cover vitrification for cryopreservation of ovarian tissues increases follicle viability and pregnancy capability in mice[J].Hum Reprod,2006,21(11):2794-2800.
    [18] Isachenko E,Isachenko V,Nawroth F,et al.Human ovarian tissue preservation:is vitrification acceptable method for assisted reproduction[J].Cryo Letters,2008,29(4):301-314.
    [19] Santos RR,Tharasanit T,Van Haeflen T,et al.Vitrification of goat preantral follicles enclosed in ovarian tissue by using conventional and solid surface vitrification methods[J].Cell Tissue Res,2007,327(1):167-176.
  • [1] 何玉晋茂生杜丹丽王才智 . RASSF 1A基因在卵巢癌组织及腹腔冲洗液中甲基化的研究. 蚌埠医学院学报, 2011, 36(1): 35-37,41.
    [2] 杨晓东 . 卵巢癌组织中miR-377的表达及其与临床病理参数的关系. 蚌埠医学院学报, 2021, 46(2): 210-213. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2021.02.019
    [3] 王立锋程群仙王文琴徐军 . 冷冻技术在宫颈病变中个性化治疗的应用价值. 蚌埠医学院学报, 2018, 43(7): 892-895. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2018.07.014
    [4] 骆丽华刘雨生栾红兵季静娟郑圣霞 . 体外受精周期中空卵泡综合征3例报道及文献复习. 蚌埠医学院学报, 2010, 35(2): 158-161.
    [5] 王益民张庆 . 胃黏膜肠化与胃癌组织发生的关系. 蚌埠医学院学报, 2004, 29(2): 123-125.
    [6] 王玲玲席玉玲凌斌赵卫东承泽农 . 凋亡抑制基因Livin在卵巢上皮性癌组织中的表达及其与PTEN的相关性研究. 蚌埠医学院学报, 2011, 36(3): 223-226.
    [7] 游牧刘文饶圣宏徐振山宋礼华 . 应用组织芯片技术检测卵巢癌组织中基质金属蛋白酶-2和p185HER-2/neu的表达及其临床意义. 蚌埠医学院学报, 2011, 36(5): 448-451.
    [8] 郑荣生张喆 . 乳腺癌组织中p16基因的甲基化状态研究. 蚌埠医学院学报, 2010, 35(1): 22-24.
    [9] 朱俊陈向军郜元坤田磊李国义 . 丝素蛋白无纺网支架体外构建组织工程化软骨. 蚌埠医学院学报, 2012, 36(11): 1283-1286.
    [10] 孙爱娟王中轩聂运娟钱峰 . VEGF在肺纤维化肺组织内的表达及其作用研究. 蚌埠医学院学报, 2018, 43(10): 1309-1313. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2018.10.011
    [11] 伍宏兵王金萍许红强陈晓艺常丽娜李保启 . 声触诊组织定量技术对慢性乙型肝炎肝纤维化程度的诊断价值. 蚌埠医学院学报, 2014, 38(5): 643-645.
    [12] 唐维平林珺珺李启信 . 胃癌组织中RASGRF1基因甲基化及蛋白表达与其临床意义. 蚌埠医学院学报, 2021, 46(9): 1223-1226. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2021.09.018
    [13] 卫志锋王琳琳冯季杨文王俊丽贾倩郝秀轻刘圣君 . 甘草酸二铵对腹膜透析大鼠腹膜纤维化及结缔组织生长因子的影响. 蚌埠医学院学报, 2017, 42(5): 573-576. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2017.05.004
    [14] 侯雨于扬杨晓辉于勤邓春颖 . 结缔组织生长因子基因启动子甲基化状态与糖尿病视网膜病变关系的研究. 蚌埠医学院学报, 2020, 45(1): 67-70. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2020.01.017
    [15] 韩德会 . 残留卵巢综合征10例分析. 蚌埠医学院学报, 2005, 30(5): 455-455.
    [16] 马玲张竞姚婷婷 . 复发性卵巢癌治疗方法的选择. 蚌埠医学院学报, 2008, 33(4): 414-415.
    [17] 张友赵胤德张建华 . 卵巢恶性卵黄囊瘤误诊1例. 蚌埠医学院学报, 2009, 34(4): 289-289.
    [18] 陈军莹姚德生 . microRNA在卵巢癌中的研究进展. 蚌埠医学院学报, 2012, 36(1): 119-122.
    [19] 刘丽君杜丹丽 . 卵巢浆液性癌54例临床分析. 蚌埠医学院学报, 2014, 38(5): 609-612.
    [20] 方凤如谢景来陈海燕 . 卵巢冠囊肿的超声表现及误诊分析. 蚌埠医学院学报, 2015, 40(6): 787-788. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2015.06.029
  • 加载中
计量
  • 文章访问数:  3820
  • HTML全文浏览量:  277
  • PDF下载量:  9
  • 被引次数: 0
出版历程
  • 收稿日期:  2014-08-12

不同玻璃化冷冻载体对人卵巢组织冷冻效果的影响

    通讯作者: 周平, 副主任医师.zhoup-325@yahoo.com.cn
    作者简介: 郑轶(1986-), 女, 住院医师.
  • 1. 蚌埠医学院第一附属医院 妇产科, 安徽 蚌埠 233004;
  • 2. 安徽医科大学附属医院 生殖医学中心, 安徽 合肥 230031

摘要: 目的: 比较不同的玻璃化冷冻载体对人卵巢组织冷冻效果的影响,为人卵巢组织玻璃化冷冻方案的选择提供理论基础和实验参考依据.方法: 预处理人卵巢皮质切成10 mm×1 mm×1 mm大小,随机分为新鲜组(A组)、针浸润玻璃化冷冻组(B组)、表面玻璃化冷冻组(C组)和直接覆盖玻璃化冷冻组(D组).A组直接予以固定、组织切片及HE染色;B、C、D 3组采用不同玻璃化冷冻载体冷冻后,投入液氮保存2个月,采用快速复温法解冻后予以固定、切片及染色.行形态学分析,通过计算各组卵巢组织切片中正常形态始基卵泡率,比较各组冷冻效果.结果: 4组共计数809个始基卵泡,其中正常形态始基卵泡率分别为:A组96.12%,B组88.14%,C 组80.00%,D组81.25%.行玻璃化冷冻的3组卵巢组织正常形态始基卵泡率均明显小于A组(P< 0.01);而B组、C组和D组正常形态始基卵泡率差异均无统计学意义(P >0.05).结论: 玻璃化冷冻后人卵巢组织正常形态始基卵泡率较新鲜组织下降,但仍能较好地保存人类卵巢组织,可用于人类卵巢组织的冷冻保存.

English Abstract

参考文献 (19)

目录

    /

    返回文章
    返回