• 中国科技论文统计源期刊
  • 中国科技核心期刊
  • 中国高校优秀期刊
  • 安徽省优秀科技期刊

留言板

尊敬的读者、作者、审稿人, 关于本刊的投稿、审稿、编辑和出版的任何问题, 您可以本页添加留言。我们将尽快给您答复。谢谢您的支持!

姓名
邮箱
手机号码
标题
留言内容
验证码

大鼠脊髓损伤前后外周血CD3+CD8+CD28-和CD3+CD8+CD28+细胞亚群的变化

江政松 胡建国 吕合作

引用本文:
Citation:

大鼠脊髓损伤前后外周血CD3+CD8+CD28-和CD3+CD8+CD28+细胞亚群的变化

    作者简介: 江政松(1986-),男,硕士研究生.
    通讯作者: 吕合作, 教授.lhz233003bmc@gmail.com
  • 基金项目:

    国家自然科学基金资助项目(81071268,81171465,81271363)

  • 中图分类号: R651.2

The changes of CD3+CD8+CD28- and CD3+CD8+CD28+ T cell subsets in peripheral blood of rats with spinal cord injury

    Corresponding author: LÜ He-zuo, 教授.lhz233003bmc@gmail.com
  • CLC number: R651.2

  • 摘要: 目的:探讨SD大鼠脊髓损伤(spinal cord injury,SCI)前后外周血抑制性T细胞(suppress T lymphocytes,Ts)和细胞毒性T细胞(cytotoxic T lymphocytes,Tc)亚群的变化规律。方法:取10只健康雌性SD大鼠,采用纽约大学脊髓损伤撞击仪制作重物坠落SCI模型。于SCI前及后1、3、5、7、14、21、28和56d收集外周血,流式细胞术检测外周血淋巴细胞CD3+CD8+CD28-Ts 和CD3+CD8+CD28+Tc亚群的变化规律。结果:SCI前,正常大鼠外周血中Ts和Tc亚群占CD3+总T细胞的百分比分别为(30.27±12.09)%和(14.75±4.29)%。损伤后1 d,Ts的比例为(22.58±12.12)%。术后5 d时其百分比下降至最低,为(20.86±10.41)%。术后7~21 d,其比例恢复至术前水平,28 d时显著升高,其比例为(37.90±12.98)%。56 d时其比例为(33.79±11.44)%,恢复至损伤前水平(P>0.05)。Tc和Ts亚群的变化趋势相反,在损伤后1、5、21和28 d时其比例分别为(17.29±7.10)%、(20.02±6.24)%、(23.89±6.78)%和(13.81±11.21)%。但56 d时其比例没有恢复至术前水平,而是进一步下降至(8.71±6.44)%(P<0.01)。结论:在SCI后的早期阶段,SD大鼠外周血Tc占明显优势,提示Ts功能抑制、Tc功能增强是SCI免疫损伤机制之一。SCI后5~21 d是进行免疫调节治疗的关键时间窗。
  • [1] Lee BB,Cripps RA,Fitzharris M,et al.The global map for traumatic spinal cord injury epidemiology:update 2011,global incidence rate[J].Spinal Cord,2014,52(2):110-116.
    [2] Lannotti CA,Clark M,Horn KP,et al.A combination immunomodulatory treatment promotes neuroprotection and locomotor recovery after contusion SCI[J].Exp Neurol,2011,230(1):3-15.
    [3] Crutcher KA,Gendelman HE,Kipnis J,et al.Debate:“Is Increasing Neuroinflammation Beneficial for Neural Repair?”[J].J Neuroimmune Pharmacol,2006,1(3):195-211.
    [4] Luckheeram RV,Zhou R,Verma AD,et al.CD4+T cells:differentiation and functions[J].Clin Dev Immunol,2012,2012:925135.
    [5] Suzuki M,Konya C,Goronzy JJ,et al.Inhibitory CD8+ T cells in autoimmune disease[J].Hum Immunol,2008,69(11):781-789.
    [6] Smith TR,Kumar V.Revival of CD8+ Treg-mediated suppression[J].Trends Immunol,2008,29(7):337-342.
    [7] Filaci G,Fenoglio D,Fravega M,et al.CD8+ CD28- T regulatory lymphocytes inhibiting T cell proliferative and cytotoxic functions infiltrate human cancers[J].J Immunol,2007,179(7):4323-4334.
    [8] Basso DM,Beattie MS,Bresnahan JC.A sensitive and reliable locomotor rating scale for open field testing in rats[J].J Neurotrauma,1995,12(1):1-21.
    [9] Basso DM,Beattie MS,Bresnahan JC,et al.MASCIS evaluation of open field locomotor scores:effects of experience and teamwork on reliability.Multicenter Animal Spinal Cord Injury Study[J].J Neurotrauma,1996,13(7):343-359.
    [10] Pardridge WM.Blood-brain barrier biology and methodology[J].J Neurovirol,1999,5(6):556-569.
    [11] Thawer SG,Mawhinney L,Chadwick K,et al.Temporal changes in monocyte and macrophage subsets and microglial macrophages following spinal cord injury in the lys-egfp-ki mouse model[J].J Neuroimmunol,2013,261(1/2):7-20.
    [12] Smoleńska Z,Pawowska J,Zdrojewski Z,et al.Increased percentage of CD8+CD28T cells correlates with clinical activity in primary Sjögren's syndrome[J].Cell Immunol,2012,278(1/2):143-151.
    [13] Mikulkova Z,Praksova P,Stourac P,et al.Numerical defects in CD8+CD28T-suppressor lymphocyte population in patients with type 1 diabetes mellitus and multiple sclerosis[J].Cell Immunol,2010,262(2):75-79.
    [14] Donnelly DJ,Popovich PG.Inflammation and its role in neuroprotection,axonal regeneration and functional recovery after spinal cord injury[J].Exp Neurol, 2008, 209(2):378-388.
    [15] Lee KD,Chow WN,Sato-Bigbee C,et al.FTY720 reduces inflammation and promotes functional recovery after spinal cord injury[J].J Neurotrauma,2009,26(12):2335-2344.
    [16] Schwartz M.Beneficial autoimmune T cells and posttraumatic neuroprotection[J].Ann N Y Acad Sci, 2000,917:341-347.
    [17] Deb C,Lafrance-Corey RG,Schmalstieg WF,et al.CD8+ T cells cause disability and axon loss in a mouse model of multiple sclerosis[J].PLoS One,2010,5(8):e12478.
    [18] Mueller CA,Schluesener HJ,Conrad S,et al.Spinal cord injury-induced expression of the immune-regulatory chemokine interleukin-16 caused by activated microglia/macrophages and CD8+ cells[J].J Neurosurg Spine,2006,4(3):233-240.
    [19] Bieber AJ,Kerr S,Rodriguez M.Efficient central nervous system remyelination requires T cells[J].Ann Neurol,2003, 53(5):680-684.
  • [1] 朱海胡建国吕合作 . 流式细胞术检测脊髓损伤大鼠局部浸润的巨噬细胞亚群. 蚌埠医学院学报, 2013, 37(8): 925-928.
    [2] 骆二红胡建国吕合作 . SD大鼠脊髓损伤前后外周血T淋巴细胞亚群的变化. 蚌埠医学院学报, 2012, 36(6): 621-623,626.
    [3] 赵修春姚春艳李柏青徐凤珍 . 流式细胞术检测小鼠中性粒细胞吞噬功能的方法学探讨. 蚌埠医学院学报, 2004, 29(5): 388-390.
    [4] 蔡辉姜丽娜李柏青 . 流式细胞术检测中性粒细胞产生活性氧方法学探讨. 蚌埠医学院学报, 2010, 35(6): 541-544,547.
    [5] 吕合作李柏青 . 胞内磷酸化蛋白酪氨酸激酶的流式细胞术检测. 蚌埠医学院学报, 2005, 30(2): 95-97.
    [6] 汪洪涛唐洁姚春艳宋传旺马华郭术俊李柏青钱中清 . 《流式细胞术》课程分层次教学探索与实践. 蚌埠医学院学报, 2018, 43(7): 970-972. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2018.07.039
    [7] 杨雯雯查艳芳毛菊胡世莲程民 . 流式细胞术和病理骨髓活检在非霍奇金淋巴瘤骨髓侵犯的诊断价值比较. 蚌埠医学院学报, 2022, 47(2): 227-230. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2022.02.023
    [8] 金齐力姜丽娜姚春艳闵宏林李柏青 . 流式细胞术检测单核巨噬细胞吞噬荧光素标记结核分枝杆菌的方法学探讨. 蚌埠医学院学报, 2008, 33(5): 505-508.
    [9] 刘小林周彦孙林 . 流式细胞仪检测网织红细胞百分比性能评价. 蚌埠医学院学报, 2010, 35(8): 828-830.
    [10] 薛祝平马飞唐洁李柏青 . 转录因子RORγt对T细胞亚群产生IFN-γ的调控作用. 蚌埠医学院学报, 2008, 33(6): 652-655.
    [11] 武文娟沈继龙李柏青 . MtbAg体外激活扩增的人γδT细胞表面L-选择素的动态变化. 蚌埠医学院学报, 2005, 30(3): 192-194.
    [12] 姚春艳金齐力姜丽娜唐洁李柏青 . 正常人外周血自然杀伤T细胞(CD3+ CD16+ CD56+)比例. 蚌埠医学院学报, 2008, 33(4): 379-382.
    [13] 饶珊珊黄丽皮海菊尚晖 . 穴位针灸联合膀胱康复训练对脊髓损伤伴神经源性膀胱病人预后的影响. 蚌埠医学院学报, 2018, 43(4): 528-530. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2018.04.031
    [14] 梁华梁友宝李柏青 . 人外周血白介素-22产生细胞在不同淋巴细胞亚群中的比例. 蚌埠医学院学报, 2011, 36(5): 441-444.
    [15] 梁友宝梁华李柏青 . 白介素-9产生细胞在不同淋巴细胞亚群中的比例. 蚌埠医学院学报, 2011, 36(5): 437-440.
    [16] 姜丽娜姚春艳金齐力李柏青 . Th1型相关细胞因子对人中性粒细胞吞噬功能的影响. 蚌埠医学院学报, 2008, 33(3): 256-259.
    [17] 朱安友陈礼文李柏青 . 成人外周血细胞中Th2功能亚群分化的体外实验研究. 蚌埠医学院学报, 2004, 29(6): 479-481.
    [18] 许培权龚建平 . 全反式维A酸诱导HL-60细胞分化的判定. 蚌埠医学院学报, 2005, 30(3): 189-192.
    [19] 买月琴陶志勇刘丹陈勇方强李柏青夏惠 . 间日疟现症患者外周血树突状细胞亚群的变化. 蚌埠医学院学报, 2012, 36(10): 1144-1146.
    [20] 武加标李志军李柏青陈琳洁唐洁任敏 . 系统性红斑狼疮患者外周血CD14+单核细胞表面TLR2、TLR4表达的变化. 蚌埠医学院学报, 2011, 36(1): 4-6,10.
  • 加载中
计量
  • 文章访问数:  3709
  • HTML全文浏览量:  434
  • PDF下载量:  191
  • 被引次数: 0
出版历程
  • 收稿日期:  2013-12-09

大鼠脊髓损伤前后外周血CD3+CD8+CD28-和CD3+CD8+CD28+细胞亚群的变化

    通讯作者: 吕合作, 教授.lhz233003bmc@gmail.com
    作者简介: 江政松(1986-),男,硕士研究生.
  • 1. 蚌埠医学院第一附属医院 中心实验室, 安徽 蚌埠 233004;
  • 2. 安徽省感染与免疫重点实验室, 安徽 蚌埠 233030;
  • 3. 江西省九江市第一人民医院 检验科, 332000;
  • 4. 安徽省组织移植重点实验室, 安徽 蚌埠 233030
基金项目:  国家自然科学基金资助项目(81071268,81171465,81271363)

摘要: 目的:探讨SD大鼠脊髓损伤(spinal cord injury,SCI)前后外周血抑制性T细胞(suppress T lymphocytes,Ts)和细胞毒性T细胞(cytotoxic T lymphocytes,Tc)亚群的变化规律。方法:取10只健康雌性SD大鼠,采用纽约大学脊髓损伤撞击仪制作重物坠落SCI模型。于SCI前及后1、3、5、7、14、21、28和56d收集外周血,流式细胞术检测外周血淋巴细胞CD3+CD8+CD28-Ts 和CD3+CD8+CD28+Tc亚群的变化规律。结果:SCI前,正常大鼠外周血中Ts和Tc亚群占CD3+总T细胞的百分比分别为(30.27±12.09)%和(14.75±4.29)%。损伤后1 d,Ts的比例为(22.58±12.12)%。术后5 d时其百分比下降至最低,为(20.86±10.41)%。术后7~21 d,其比例恢复至术前水平,28 d时显著升高,其比例为(37.90±12.98)%。56 d时其比例为(33.79±11.44)%,恢复至损伤前水平(P>0.05)。Tc和Ts亚群的变化趋势相反,在损伤后1、5、21和28 d时其比例分别为(17.29±7.10)%、(20.02±6.24)%、(23.89±6.78)%和(13.81±11.21)%。但56 d时其比例没有恢复至术前水平,而是进一步下降至(8.71±6.44)%(P<0.01)。结论:在SCI后的早期阶段,SD大鼠外周血Tc占明显优势,提示Ts功能抑制、Tc功能增强是SCI免疫损伤机制之一。SCI后5~21 d是进行免疫调节治疗的关键时间窗。

English Abstract

参考文献 (19)

目录

    /

    返回文章
    返回