• 中国科技论文统计源期刊
  • 中国科技核心期刊
  • 中国高校优秀期刊
  • 安徽省优秀科技期刊

留言板

尊敬的读者、作者、审稿人, 关于本刊的投稿、审稿、编辑和出版的任何问题, 您可以本页添加留言。我们将尽快给您答复。谢谢您的支持!

姓名
邮箱
手机号码
标题
留言内容
验证码

氯氰菊酯对小鼠小脑组织氧化损伤及核转录因子-E2相关因子2基因表达的影响

周礼华 陈冲 张朋 王力 吴学森

引用本文:
Citation:

氯氰菊酯对小鼠小脑组织氧化损伤及核转录因子-E2相关因子2基因表达的影响

    作者简介: 周礼华(1977-),女,硕士,讲师.
  • 基金项目:

    安徽省自然科学基金项目(1508085QH188);安徽省特色专业“预防医学”项目(皖教高[2011]5号)

  • 中图分类号: R595.4

Effect of cypermethrin on the oxidative damage and mRNA expression of nuclear factor erythroid-2-related factor 2 in mice cerebellar tissue

  • CLC number: R595.4

  • 摘要: 目的:研究氯氰菊酯对小鼠小脑组织氧化损伤及核转录因子-E2相关因子2(Nrf2)基因表达的影响。方法:以40只昆明小鼠为受试动物,随机分为4组,包括1个阴性对照组和3个氯氰菊酯染毒组,染毒组按5、10、20 mg/kg 3个剂量水平灌胃染毒小鼠3周,以小脑组织匀浆测定丙二醛(MDA)、谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-PX)、总超氧化物歧化酶(T-SOD)、过氧化氢酶(CAT)的含量;用免疫组织化学法检测Nrf2在小脑组织细胞中的表达;用逆转录聚合酶链反应(RT-PCR)检测Nrf2基因表达。结果:随着氯氰菊酯染毒剂量升高,小脑组织MDA含量逐渐增加,GSH-PX、T-SOD、CAT等酶学活性逐渐下降,染毒组与对照组比较差异均有统计学意义(P<0.01)。免疫组织化学法显示,随着染毒剂量增加,小鼠小脑组织细胞核Nrf2阳性细胞表达增加,与对照组比较差异均有统计学意义(P<0.01),高剂量染毒组胞核阳性细胞表达均高于低剂量染毒组(P<0.01)。RT-PCR显示,随着染毒剂量增加,Nrf2条带光密度值增加,与对照组比较差异具有统计学意义(P<0.01),高剂量染毒组基因表达均高于低剂量染毒组(P<0.01)。结论:CYP染毒造成小鼠小脑组织氧化损伤,导致氧化应激反应中关键分子Nrf2由细胞质向细胞核转位,从而增强脑组织对抗氧化应激的能力。
  • [1] SINGH AK,TIWARI MN,PATEL DK,et al.Long term exposure to cypermethrin induces nigrostriatal dopaminergic neurodegeneration in adult rats:postnatal exposure enhances the susceptibility during adulthood[J].Neurobiol Aging,2012,33(2):404.
    [2] CHI CC,CHOU CT,LIANG WZ,et al.Effect of the pesticide,deltamethrin,on Ca2+ signaling and apoptosis in OC2 human oral cancer cells[J].Drug Chem Toxicol,2014,37(1):25.
    [3] ROMERO A,ARES I,RAMOS E,et al.Evidence for dose-additive effects of a type Ⅰ pyrethroid mixture.In vitro assessment[J].Environ Res,2015,4(138):58.
    [4] RAMOS-CHAVEZ LA,SORDO M,CALDERON-ARANDA E,et al.permethrin/allethrin mixture induces genotoxicity and cytotoxicity in human peripheral blood lymphocytes[J].Toxicol Environ Health A,2015,78(1):7.
    [5] CAO D,CHEN N,ZHU C,et al.β-cypermethrin-induced acute neurotoxicity in the cerebral cortex of mice[J].Drug Chem Toxicol,2015,8(1):44.
    [6] RENE C,LOPEZ E,CLAUSTRES M,et al.NF-E2-related factor 2,a key inducer of antioxidant defenses,negatively regulates the CFTR transcription[J].Cell Mol Life Sci,2010,67(13):2297.
    [7] NGUYEN T,NIOI P,PICKETT CB.The Nrf2-antioxidant response element signaling pathway and its activation by oxidative stress[J].J Biol Chem,2009,284:13291.
    [8] WANG G,XIU P,LI F.Vitamin A supplementation alleviates extrahepatic cholestasis liver injury through Nrf2 activation[J].Oxid Med Cell Longev,2014,2014:273692.
    [9] JIN Y,WANG L,RUAN M,et al.Cypermethrin exposure during puberty induces oxidative stress and endocrine disruption in male mice[J].Chemosphere,2011,84(1):124.
    [10] HAYES JD,MCMAHON M.NRF2 and KEAP1 mutations:permanent activation of an adaptive response in cancer[J].Trends Biochem Sci,2009,34(4):176.
    [11] SHEN G,KONG AN.Nrf2 plays an important role in coordinated regulation of Phase Ⅱ drug metabolism enzymes and PhaseⅢ drug transporters[J].Biopharm Drug Dispos,2009,30(7):345.
    [12] LIU Q,ZHANG H,Smeester L,et al.The NRF2-mediated oxidative stress response pathway is associated with tumor cell resistance to arsenic trioxide across the NCI-60 panel[J].BMC Med Genomics,2010,8(3):37.
    [13] 曹旭,张临洪.溴氰菊酯及 6- 羟基多巴胺对 PC12 细胞Nrf2/ARE 通路的影响[J].现代预防医学,2013,40(17):3253.
    [14] AGARWAL A,NICK HS.Renal response to tissue injury:lessons from heme oxygenase-1 gene ablation and expression[J].J Am Soc Nephrol,2000,11(5):965.
    [15] CAI Z,LOU Q,WANG F.N-acetylcysteine protects against liver injure induced by carbon tetrachloride via activation of the Nrf2/HO-1 pathway[J].Int J Clin Exp Pathol,2015,8(7):8655.
    [16] MARTIN D,ROJO AI,SALINAS M,et al.Regulation of heme oxygenase-1 expression through the phosphatidylinositol 3-kinase/Akt pathway and the Nrf2 transcription factor in response to the antioxidant phytochemical carnosol[J].J Biol Chem,2004,279(10):8919.
    [17] SHAO JL,ZHOU YY,CHEN HM,et al.Sevoflurane induces neuron HO-1 mRNA expression via P70S6K/Nrf2 kinase signal pathways[J].Chin Pharmacol Bull,2009,25(2):209.
  • [1] 张朋陈冲张凡杜首楠周礼华 . 氯氰菊酯对雄性小鼠肝脏组织的氧化损伤. 蚌埠医学院学报, 2015, 40(11): 1479-1481. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2015.11.006
    [2] 王力张梦媛吕卉申玲张玉媛赵文红 . 全氟辛酸致小鼠脾脏氧化损伤的实验研究. 蚌埠医学院学报, 2015, 40(6): 716-718. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2015.06.005
    [3] 周燕妮章宏张玉媛 . Nrf2在镉诱导的氧化损伤和致癌中保护作用的研究进展. 蚌埠医学院学报, 2017, 42(8): 1149-1151. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2017.08.045
    [4] 赵文红厉曙光 . 邻苯二甲酸二乙基己酯对小鼠各器官损伤的实验研究. 蚌埠医学院学报, 2005, 30(4): 283-286.
    [5] 董银凤陈前芬 . 硫酸镁对小鼠脑缺血再灌注损伤后一氧化氮及ATP酶的影响. 蚌埠医学院学报, 2010, 35(4): 330-333.
    [6] 张晓猛刘超夏光云 . Th1/Th2型细胞因子在小鼠肺纤维化发病中的作用. 蚌埠医学院学报, 2013, 37(8): 932-934.
    [7] 马新壮周勇兵王力 . 芦丁对高糖、高脂饮食致小鼠肾脏损害的保护作用. 蚌埠医学院学报, 2022, 47(8): 989-993. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2022.08.001
    [8] 王文江冯琦袁杰高玉光 . 激活转录因子-2调控小鼠成釉细胞基质金属蛋白酶-20分子机制的初步研究. 蚌埠医学院学报, 2014, 39(11): 1460-1463.
    [9] 赵士弟杨卫东汪洪涛 . 小鼠全脑缺血再灌注损伤模型的研究. 蚌埠医学院学报, 2004, 29(2): 101-103.
    [10] 朱旭友吕鸿燕赵士弟陈前芬 . 硫酸镁对小鼠全脑缺血再灌注损伤模型NO、NOS的影响. 蚌埠医学院学报, 2009, 34(11): 956-958.
    [11] 罗裕旋何小媚邱群芳杨建军朱飞 . 复方护肝汤对刀豆蛋白A诱导小鼠肝损伤的保护作用. 蚌埠医学院学报, 2011, 36(6): 554-556.
    [12] 俞慧赵文红刘春芳周礼华江城梅 . 茶多酚对草甘膦诱导小鼠睾丸支持细胞损伤的影响. 蚌埠医学院学报, 2013, 37(6): 652-654.
    [13] 丁亚刘锦波 . 小鼠脊髓损伤中的长链非编码RNA表达谱. 蚌埠医学院学报, 2016, 41(12): 1541-1544. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2016.12.001
    [14] 胡勇裴庆姚敏 . 脓毒血症小鼠致肺损伤模型的研究. 蚌埠医学院学报, 2019, 44(4): 429-433. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2019.04.003
    [15] 符炜程向阳刘娣刘刚 . 丙泊酚对小鼠急性肺损伤NLRP3信号通路的影响. 蚌埠医学院学报, 2021, 46(1): 14-17. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2021.01.004
    [16] 周亚妮李可刘丹 . 基于CLP败血症小鼠中补体C5a与白细胞介素-6相关性研究. 蚌埠医学院学报, 2017, 42(2): 148-150. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2017.02.003
    [17] 吕鸿燕朱旭友陈前芬 . 硫酸镁预处理对小鼠全脑缺血再灌注损伤后一氧化氮及一氧化氮合酶的影响. 蚌埠医学院学报, 2009, 34(9): 762-764.
    [18] 陈辉王丽雯张大海 . 刺五加注射液对小鼠全脑缺血再灌注损伤的影响. 蚌埠医学院学报, 2005, 30(3): 224-225.
    [19] 吴良霞林晓亮徐敏张建华 . 哮喘小鼠肺组织中趋化因子干扰素-γ诱导蛋白-10、干扰素-γ诱导单核细胞因子表达及其意义. 蚌埠医学院学报, 2009, 34(1): 15-17.
    [20] 孙祥瑞高家荣汪庆飞王婷 . 补骨脂-肉豆蔻醇提物对脾虚泄泻小鼠水通道蛋白及结肠中细胞因子的影响. 蚌埠医学院学报, 2018, 43(2): 152-155,159. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2018.02.004
  • 加载中
计量
  • 文章访问数:  3819
  • HTML全文浏览量:  457
  • PDF下载量:  145
  • 被引次数: 0
出版历程
  • 收稿日期:  2016-04-26

氯氰菊酯对小鼠小脑组织氧化损伤及核转录因子-E2相关因子2基因表达的影响

    作者简介: 周礼华(1977-),女,硕士,讲师.
  • 蚌埠医学院 预防医学系, 安徽 蚌埠 233030
基金项目:  安徽省自然科学基金项目(1508085QH188);安徽省特色专业“预防医学”项目(皖教高[2011]5号)

摘要: 目的:研究氯氰菊酯对小鼠小脑组织氧化损伤及核转录因子-E2相关因子2(Nrf2)基因表达的影响。方法:以40只昆明小鼠为受试动物,随机分为4组,包括1个阴性对照组和3个氯氰菊酯染毒组,染毒组按5、10、20 mg/kg 3个剂量水平灌胃染毒小鼠3周,以小脑组织匀浆测定丙二醛(MDA)、谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-PX)、总超氧化物歧化酶(T-SOD)、过氧化氢酶(CAT)的含量;用免疫组织化学法检测Nrf2在小脑组织细胞中的表达;用逆转录聚合酶链反应(RT-PCR)检测Nrf2基因表达。结果:随着氯氰菊酯染毒剂量升高,小脑组织MDA含量逐渐增加,GSH-PX、T-SOD、CAT等酶学活性逐渐下降,染毒组与对照组比较差异均有统计学意义(P<0.01)。免疫组织化学法显示,随着染毒剂量增加,小鼠小脑组织细胞核Nrf2阳性细胞表达增加,与对照组比较差异均有统计学意义(P<0.01),高剂量染毒组胞核阳性细胞表达均高于低剂量染毒组(P<0.01)。RT-PCR显示,随着染毒剂量增加,Nrf2条带光密度值增加,与对照组比较差异具有统计学意义(P<0.01),高剂量染毒组基因表达均高于低剂量染毒组(P<0.01)。结论:CYP染毒造成小鼠小脑组织氧化损伤,导致氧化应激反应中关键分子Nrf2由细胞质向细胞核转位,从而增强脑组织对抗氧化应激的能力。

English Abstract

参考文献 (17)

目录

    /

    返回文章
    返回