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AMPK激动剂AICAR抑制糖氧剥夺损伤后星形胶质细胞的炎性反应及对神经元损伤的保护作用

赵晶晶 杨振坤 孙洁 王伟 董文艳 陈静瑜

引用本文:
Citation:

AMPK激动剂AICAR抑制糖氧剥夺损伤后星形胶质细胞的炎性反应及对神经元损伤的保护作用

    作者简介: 赵晶晶(1981-),女,博士,助教.
    通讯作者: 陈静瑜, 主任医师.chenjingyu333@sina.com
  • 基金项目:

    国家自然科学基金项目(30971464);南京医科大学科技发展基金重点项目(2017NJMUZD125);江苏省无锡市卫生计生委科研项目(Q201715)

  • 中图分类号: R743.31

Effect of the AMPK activator AICAR on inhibiting the inflammatory response of astrocytes and protecting the neurons from injury after oxygen-glucose deprivation treatment

    Corresponding author: CHEN Jing-yu, 主任医师.chenjingyu333@sina.com
  • CLC number: R743.31

  • 摘要: 目的:探讨AMPK激动剂AICAR对糖氧剥夺(oxygen-glucose deprivation,OGD)损伤后原代星形胶质细胞炎性反应的影响及对损伤神经元的保护作用。方法:通过构建原代培养星形胶质细胞和神经元的OGD模型,在正常培养的原代星形胶质细胞中加入对照溶剂和AICAR(0.5 mmol/L),后给予OGD处理,在复氧第12小时通过ELISA检测促炎因子肿瘤坏死因子α(TNF-α)、白细胞介素(IL)-6和IL-1β的表达变化,通过Western blotting方法检测磷酸化p38的蛋白表达;再将上述对照组和AICAR组OGD处理后的星形胶质细胞培养液,加入OGD损伤后的原代培养神经元中,通过LDH检测及免疫荧光双标方法,检测AICAR对缺糖缺氧损伤神经元的保护作用。结果:在原代培养神经元及星形胶质细胞OGD损伤模型中,与对照组比较,AICAR组显著地降低了OGD损伤后星形胶质细胞分泌的促炎因子TNF-α、IL-6和IL-1β(P<0.01),抑制p38磷酸化,且明显降低了缺糖缺氧造成的神经元损伤(P<0.01),促进损伤的神经突起修复。结论:AICAR抑制OGD损伤后星形胶质细胞炎性因子的释放,对OGD损伤神经元具有保护作用。
  • [1] ELTZSCHIG HK,ECKLE T.Ischemia and reperfusion——from mechanism to translation[J].Nat Med,2011,17(11):1391.
    [2] 吴咏梅,陶茹莹,孟祥宝,等.缺血性脑卒中损伤机制研究进展[J].吉林中医药,2018(3):368.
    [3] IDROVO JP,YANG WL,JACOB A,et al.AICAR attenuates organ injury and inflammatory response after intestinal ischemia and reperfusion[J].Mol Med,2015,20:676.
    [4] CESCHIN J,HVRLIMANN HC,SAINT-MARC C,et al.Disruption of nucleotide homeostasis by the antiproliferative drug 5-aminoimidazole-4-carboxamide -1-β-d-ribofuranoside monophosphate (AICAR)[J].J Biol Chem,2015,290(39):23947.
    [5] 蔚海霞,冉强强,王明山,等.AMPK激活剂对老年大鼠全脑缺血再灌注海马神经元凋亡影响[J].青岛大学医学院学报,2015(6):650.
    [6] GIRI S,NATH N,SMITH B,et al.5-aminoimidazole-4-carboxamide-1-β-4-ribofuranoside inhibits proinflammatory response in glial cells:a possible role of AMP-activated protein kinase[J].J Neurosci,2004,24(2):479.
    [7] GIORDANO G,COSTA LG.Primary neurons in culture and neuronal cell lines for in vitro neurotoxicological studies[J].Methods Mol Biol,2011,758:13.
    [8] NEUHAUS AA,COUCH Y,HADLEY G,et al.Neuroprotection in stroke:the importance of collaboration and reproducibility[J].Brain,2017,140(8):2079.
    [9] VINCENT EE,COELHO PP,BLAGIH J,et al.Differential effects of AMPK agonists on cell growth and metabolism[J].Oncogene,2015,34(28):3627.
    [10] CARLING D.Ampk[J].Curr Biol,2004,14(6):R220.
    [11] ZIEMKA-NALECZ M,JAWORSKA J,ZALEWSKA T.Insights into the neuroinflammatory responses after neonatal hypoxia-ischemia[J].J Neuropathol Exp Neurol,2017,76(8):644.
    [12] TUTTOLOMONDO A,DI RAIMONDO D,DI SCIACCA R,et al.Inflammatory cytokines in acute ischemic stroke[J].Curr Pharm Des,2008,14(33):3574.
    [13] SHI X,XU L,DOYCHEVA DM,et al.Sestrin2,as a negative feedback regulator of mTOR,provides neuroprotection by activation AMPK phosphorylation in neonatal hypoxic-ischemic encephalopathy in rat pups[J].J Cereb Blood Flow Metab,2017,37(4):1447.
    [14] GAO Y,HOU R,LIU F,et al.Obacunone causes sustained expression of MKP-1 thus inactivating p38 MAPK to suppress pro-inflammatory mediators through intracellular MIF[J].J Cell Biochem,2018,119(1):837.
    [15] CHEN D,PAN D,TANG S,et al.Administration of chlorogenic acid alleviates spinal cord injury via TLR4/NFkappaB and p38 signaling pathway antiinflammatory activity[J].Mol Med Rep,2018,17(1):1340.
    [16] CHO RL,LIN WN,WANG CY,et al.Heme oxygenase-1 induction by rosiglitazone via PKCalpha/AMPKalpha/p38 MAPKalpha/PPARgamma pathway suppresses lipopolysaccharide-mediated pulmonary inflammation[J].Biochem Pharmacol,2018,148:222.
    [17] GREEN JP,SOUILHOL C,XANTHIS I,et al.Atheroprone flow activates inflammation via endothelial ATP-dependent P2X7-p38 signalling[J].Cardiovasc Res,2018,114(2):324.
    [18] HE Y,SHE H,ZHANG T,et al.p38 MAPK inhibits autophagy and promotes microglial inflammatory responses by phosphorylating ULK1[J].J Cell Biol,2018,217(1):315.
  • [1] 张从利任丽梅玫刘娣施超李晓红 . 右美托咪定对体外循环冠状动脉旁路移植术病人炎性反应和急性肾损伤的影响. 蚌埠医学院学报, 2020, 45(4): 464-468. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2020.04.011
    [2] 孙彦君 . 奥拉西坦联合醒脑静治疗脑外伤的效果及对神经元损伤的影响. 蚌埠医学院学报, 2022, 47(6): 764-768. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2022.06.015
    [3] 周艺李珍王烈成祝延方芳黄大可 . 白藜芦醇对大鼠局灶性脑缺血再灌注损伤的神经保护作用. 蚌埠医学院学报, 2011, 36(9): 921-924,930.
    [4] 陈玉芳苏建华唐金荣肖杭 . 盐酸丁咯地尔对SD大鼠坐骨神经损害后神经元的保护作用. 蚌埠医学院学报, 2006, 31(6): 582-583.
    [5] 于丽童旭辉纪洁李利樊宗兵董淑英 . 荧光示踪法在检测神经元细胞间缝隙连接功能中的应用. 蚌埠医学院学报, 2015, 40(5): 569-571. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2015.05.003
    [6] 陈辰王双燕夏玉军 . Kif15调控大鼠星形胶质细胞增殖、细胞周期及凋亡的研究. 蚌埠医学院学报, 2018, 43(1): 8-12. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2018.01.003
    [7] 孟宪栋张海锋 . 大鼠星形胶质细胞CB1R体内外差异表达. 蚌埠医学院学报, 2022, 47(5): 576-579. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2022.05.004
    [8] 孙美群陈前芬汪洪涛 . 新生大鼠大脑皮层神经元原代培养与鉴定. 蚌埠医学院学报, 2008, 33(1): 19-21.
    [9] 周礼华徐淑秀江城梅 . 新生大鼠小脑颗粒神经元原代培养与鉴定. 蚌埠医学院学报, 2011, 36(2): 121-123.
    [10] 韦道祥陈俊抛杨卫红 . 腹腔注射卡因酸对大鼠海马细胞凋亡的影响. 蚌埠医学院学报, 2004, 29(1): 9-11.
    [11] 吴明锋韩晓艳郭建磊张士忠 . lncRNA CRNDE靶向miR-212-5p调控氧糖剥夺诱导的大鼠皮质神经元损伤. 蚌埠医学院学报, 2023, 48(6): 717-722. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2023.06.003
    [12] 包同新王宇峰郭文杰张跃钟赵京元 . 胸腰段脊柱压缩骨折远隔部位疼痛与胸腰段压缩骨折的关系研究. 蚌埠医学院学报, 2018, 43(8): 1000-1002. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2018.08.006
    [13] 王雪如门运政胡淼洪玉洁刘心怡董淑英 . AMPK介导线粒体融合与裂变在抑制P2X7受体抗神经元缺氧/复氧损伤中的作用. 蚌埠医学院学报, 2020, 45(6): 714-719. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2020.06.005
    [14] 陈银玲童旭辉唐媛媛齐佳佳杜家如董淑英 . P2X7受体拮抗剂BBG抗大鼠星形胶质细胞缺氧/复氧损伤的作用. 蚌埠医学院学报, 2017, 42(6): 701-705. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2017.06.001
    [15] 聂荔LI Xiang慕丽娟王浩 . 抑制MAPK通路对大鼠癫痫持续状态引起海马神经元损伤的保护作用. 蚌埠医学院学报, 2018, 43(11): 1405-1407,1410. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2018.11.002
    [16] 朱成王淮 . 神经元特异性烯醇化酶检测对颅脑损伤诊断分型及判断预后的临床意义. 蚌埠医学院学报, 2014, 38(1): 50-52.
    [17] 刘春芳江城梅 . 表没食子儿茶素没食子酸酯抗氧化及神经元保护作用的研究进展. 蚌埠医学院学报, 2011, 36(10): 1163-1165.
    [18] 朱玉乾郑传明宁长青 . 腹腔穿刺引流对重症急性胰腺炎大鼠相关肝损伤的保护作用. 蚌埠医学院学报, 2023, 48(10): 1329-1332. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2023.10.001
    [19] 庄颖赵文红张鼎赵红 . 三羟异黄酮对胆固醇诱导内皮细胞损伤的保护作用. 蚌埠医学院学报, 2009, 34(5): 372-375.
    [20] 杨锡兰李言王盼赵士弟陈前芬 . 川芎嗪对脂多糖诱导的内皮细胞损伤的保护作用. 蚌埠医学院学报, 2016, 41(3): 284-287. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2016.03.002
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出版历程
  • 收稿日期:  2017-10-16
  • 录用日期:  2017-12-20

AMPK激动剂AICAR抑制糖氧剥夺损伤后星形胶质细胞的炎性反应及对神经元损伤的保护作用

    通讯作者: 陈静瑜, 主任医师.chenjingyu333@sina.com
    作者简介: 赵晶晶(1981-),女,博士,助教.
  • 1. 南京医科大学附属无锡人民医院 临床研究中心, 江苏 无锡 214023;
  • 2. 南京医科大学附属无锡人民医院 胸外科, 江苏 无锡 214023;
  • 3. 南京医科大学附属无锡人民医院 麻醉科, 江苏 无锡 214023
基金项目:  国家自然科学基金项目(30971464);南京医科大学科技发展基金重点项目(2017NJMUZD125);江苏省无锡市卫生计生委科研项目(Q201715)

摘要: 目的:探讨AMPK激动剂AICAR对糖氧剥夺(oxygen-glucose deprivation,OGD)损伤后原代星形胶质细胞炎性反应的影响及对损伤神经元的保护作用。方法:通过构建原代培养星形胶质细胞和神经元的OGD模型,在正常培养的原代星形胶质细胞中加入对照溶剂和AICAR(0.5 mmol/L),后给予OGD处理,在复氧第12小时通过ELISA检测促炎因子肿瘤坏死因子α(TNF-α)、白细胞介素(IL)-6和IL-1β的表达变化,通过Western blotting方法检测磷酸化p38的蛋白表达;再将上述对照组和AICAR组OGD处理后的星形胶质细胞培养液,加入OGD损伤后的原代培养神经元中,通过LDH检测及免疫荧光双标方法,检测AICAR对缺糖缺氧损伤神经元的保护作用。结果:在原代培养神经元及星形胶质细胞OGD损伤模型中,与对照组比较,AICAR组显著地降低了OGD损伤后星形胶质细胞分泌的促炎因子TNF-α、IL-6和IL-1β(P<0.01),抑制p38磷酸化,且明显降低了缺糖缺氧造成的神经元损伤(P<0.01),促进损伤的神经突起修复。结论:AICAR抑制OGD损伤后星形胶质细胞炎性因子的释放,对OGD损伤神经元具有保护作用。

English Abstract

参考文献 (18)

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