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IL-33预处理对小鼠肝脏缺血再灌注损伤的保护作用

朱平 谢莉 董传江

引用本文:
Citation:

IL-33预处理对小鼠肝脏缺血再灌注损伤的保护作用

    作者简介: 朱平(1977-), 男, 副主任医师
    通讯作者: 董传江, 810322077@qq.com
  • 基金项目:

    湖北省教育厅科研指导项目 B2017-024

    湖北省自然科学基金项目 2012FFB03708

  • 中图分类号: R619.9

Protective effect of IL-33 preconditioning on hepatic ischemia reperfusion injury in mice

    Corresponding author: DONG Chuan-jiang, 810322077@qq.com
  • CLC number: R619.9

  • 摘要: 目的探讨白细胞介素(IL)-33预处理在小鼠肝脏缺血再灌注中的作用及可能机制。方法将45只雄性C57BL/6小鼠随机分为3组,每组15只:对照组即肝脏缺血再灌注组(PBS+I/R组),静脉注射等量磷酸盐缓冲液,1 h后分离支配肝脏左、中、尾叶的肝动脉和门静脉及胆管, 应用无损伤微血管夹阻断以上血管60 min;实验组即重组白细胞介素(IL-33)预处理组(rIL-33+I/R组),静脉注射重组IL-33蛋白(每只5 μg),1 h后分离上述血管并夹闭60 min;假手术组(Sham组)小鼠除了不夹闭无损伤微血管夹外其余处理同对照组;每组小鼠再均分为3个亚组,每组5只,分别于再灌注6 h、12 h及24 h检测血清丙氨酸氨基转移酶(ALT)、天门冬氨酸氨基转移酶(AST)及IL-17A水平;另将30只同型小鼠随机分为6组,分别测定不同时段缺血肝脏组织IL-33及髓过氧化物酶(MPO)表达。结果在小鼠肝脏缺血再灌注过程中,IL-33的表达明显升高。再灌注后12 h,PBS+I/R组小鼠血清ALT、AST含量较Sham组明显升高(P < 0.01),rIL-33+I/R组血清ALT、AST含量较PBS+I/R组明显降低(P < 0.01);HE染色提示rIL-33+I/R组肝细胞损伤、中性粒细胞浸润、肝脏组织MPO含量明显低于PBS+I/R组(P < 0.01);ELISA检测血清IL-17A含量提示rIL-33+I/R组明显低于PBS+I/R组(P < 0.01)。结论IL-33在小鼠肝脏缺血再灌注过程中起到保护作用,其机制可能与其抑制IL-17A的表达,减少中性粒细胞浸润有关。
  • 图 1  小鼠肝脏I / R不同时间血清中IL-33的表达

    图 2  IL-33在Sham组及肝脏I/R各时间点表达

    图 3  小鼠缺血60min, 再灌注12h各组肝脏组织学变化

    表 1  小鼠I/R 12 h后各组血清ALT及AST变化(ni=15;U/L)

    分组 ALT AST
    Sham组 50.2±18.1 57.2±18.9
    PBS+I/R组 4 842.0±624.1** 5 434.8±1 180.7**
    rIL-33+I/R组 2 789.6±280.8**## 3 542.6±761.2**#
    F 554.93 169.65
    P < 0.01 < 0.01
    MS组内 42 156 225.687 42 657 945.047
    q检验:与Sham组比较**P < 0.01;与PBS+I/R组比较##P < 0.01
    下载: 导出CSV

    表 2  小鼠I/R 12 h各组肝脏组织MPO含量(ni=15;U/g)

    分组 MPO F P MS组内
    Sham组 9.77±2.13
    PBS+I/R组 23.18±4.31** 31.03 < 0.01 21.744
    rIL-33+I/R组 16.76±6.49**##
    q检验:与Sham组比较**P < 0.01;与PBS+I/R组比较##P < 0.01
    下载: 导出CSV

    表 3  小鼠肝脏I/R 12 h血清中IL-17A表达(ni=15;pg/mL)

    分组 IL-17A F P MS 组内
    Sham组 6.68±3.61
    PBS+I/R组 65.44±20.7** 63.08 < 0.01 211.949
    rIL-33+I/R组 26.87±13.94**##
    q检验:与Sham组比较**P < 0.01;与PBS+I/R组比较##P < 0.01
    下载: 导出CSV
  • [1] ELTZSCHIG HK.ECKLE T.Ischemia and reperfusion——from mechanism to translation[J].Nat Med, 2011, 17(11):1391. doi: 10.1038/nm.2507
    [2] HODZIC Z, SCHILL E M, BOLOCK AM, et al.IL-33 and the intestine:The good, the bad, and the inflammatory[J].Cytokine, 2017, 100:1. doi: 10.1016/j.cyto.2017.06.017
    [3] DRAKE LY, KITA H.IL-33:biological properties, functions, and roles in airway disease[J].Immunol Rev, 2017, 278(1):173.
    [4] ZHU P, DUAN L, CHEN J, et al.Gene silencing of NALP3 protects against liver ischemia-reperfusion injury in mice[J].Hum Gene Ther, 2011, 22(7):853. doi: 10.1089/hum.2010.145
    [5] CHEN J, DUAN L, XIONG A, et al.Blockade of IL-33 ameliorates Con A-induced hepatic injury by reducing NKT cell activation and IFN-gamma production in mice[J].J Mol Med (Berl), 2012, 90(12):1505. doi: 10.1007/s00109-012-0938-4
    [6] FREITAS MC, UCHIDA Y, ZHAO D, et al.Blockade of Janus kinase-2 signaling ameliorates mouse liver damage due to ischemia and reperfusion[J].Liver Transpl, 2010, 16(9):600.
    [7] MASUDA T, IWASHITA Y, HAGIWARA S, et al.Dihydrolipoyl histidinate zinc complex, a new antioxidant, attenuates hepatic ischemia-reperfusion injury in rats[J].J Gastroenterol Hepatol, 2011, 26(11):1652. doi: 10.1111/jgh.2011.26.issue-11
    [8] DUAN L, CHEN J, ZHANG H, et al.Interleukin-33 ameliorates experimental colitis through promoting Th2/Foxp3(+) regulatory T-cell responses in mice[J].Mol Med, 2012, 18(18):753.
    [9] CAYROL C, GIRARD JP.The IL-1-like cytokine IL-33 is inactivated after maturation by caspase-1[J].Proc Natl Acad Sci U S A, 2009, 106(22):9021. doi: 10.1073/pnas.0812690106
    [10] TALABOT-AYER D, LAMACCHIA C, GABAY C, et al.Interleukin-33 is biologically active independently of caspase-1 cleavage[J].J Biol Chem, 2009, 284(29):19420. doi: 10.1074/jbc.M901744200
    [11] LUTHI AU, CULLEN SP, MCNEELA EA, et al.Suppression of interleukin-33 bioactivity through proteolysis by apoptotic caspases[J].Immunity, 2009, 31(1):84. doi: 10.1016/j.immuni.2009.05.007
    [12] SEKI K, SANADA S, KUDINOVA AY, et al.Interleukin-33 prevents apoptosis and improves survival after experimental myocardial infarction through ST2 signaling[J].Circ Heart Fail, 2009, 2(6):684. doi: 10.1161/CIRCHEARTFAILURE.109.873240
    [13] SAKAI N, VAN SWERINGEN HL, QUILLIN RC, et al.Interleukin-33 is hepatoprotective during liver ischemia/reperfusion in mice[J].Hepatology, 2012, 56(4):1468. doi: 10.1002/hep.v56.4
    [14] LUO Y, ZHOU YQ, XIAO W, et al.Interleukin-33 ameliorates ischemic brain injury in experimental stroke through promoting Th2 response and suppressing Th17 response[J].Brain Res, 2015, 9(1597):86.
    [15] KONO H, FUJⅡ H, OGIKU M, et al.Role of IL-17A in neutrophil recruitment and hepatic injury after warm ischemia-reperfusion mice[J].J Immunol, 2011, 187(9):4818. doi: 10.4049/jimmunol.1100490
    [16] AKCAY A, NGUYEN Q, HE Z, et al.IL-33 exacerbates acute kidney injury[J].J Am Soc Nephrol, 2011, 22(11):2057. doi: 10.1681/ASN.2010091011
    [17] DUAN L, WANG CY, CHEN J, et al.High-mobility group box 1 promotes early acute allograft rejection by enhancing IL-6-dependent Th17 alloreactive response[J].Lab Invest, 2011, 91(1):43.
  • [1] 何先弟段立彬 . 中性粒细胞凋亡在烧伤兔急性肺损伤发病中的作用. 蚌埠医学院学报, 2013, 37(1): 9-12.
    [2] 刘金凤许瑾李勇金强余勇武朱明卓丹徐东卫李方奇胡恩赑 . 中性粒细胞在深Ⅱ度烧伤早期创面进行性损伤中的作用. 蚌埠医学院学报, 2010, 35(5): 487-488.
    [3] 于永涛丁新苑云宗金 . 急性缺血性卒中病人颈动脉斑块特征与危险因素及与中性粒/淋巴细胞比值相关性分析. 蚌埠医学院学报, 2020, 45(8): 1064-1067. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2020.08.019
    [4] 赵修春徐凤珍李柏青 . 白细胞介素-10对小鼠中性粒细胞吞噬和杀菌活性的影响. 蚌埠医学院学报, 2011, 36(8): 796-798.
    [5] 黄丽丽许礼发 . 细胞因子基因型多态性与HPV引起的子宫颈损伤相关性研究. 蚌埠医学院学报, 2012, 36(7): 783-784,787.
    [6] 蔡辉姜丽娜李柏青 . 流式细胞术检测中性粒细胞产生活性氧方法学探讨. 蚌埠医学院学报, 2010, 35(6): 541-544,547.
    [7] 姜丽娜姚春艳金齐力李柏青 . Th1型相关细胞因子对人中性粒细胞吞噬功能的影响. 蚌埠医学院学报, 2008, 33(3): 256-259.
    [8] 宋传旺葛晓松李柏青 . 结核杆菌抗原对中性粒细胞自发性凋亡的抑制作用. 蚌埠医学院学报, 2007, 32(2): 127-129.
    [9] 姜丽娜姚春艳金齐力李柏青 . 结核病患者中性粒细胞表面Toll样受体2和Toll样受体4的表达及意义. 蚌埠医学院学报, 2012, 36(6): 624-626.
    [10] 左戎王巧民 . 感染后肠易激综合征患者结肠黏膜肥大细胞与IL-2、IFN-γ的表达及意义. 蚌埠医学院学报, 2008, 33(5): 569-571,632.
    [11] 张慧秋刘丽刘玲鲁海艳张肖难 . 外周血Th1/Th2、Treg/Th17细胞因子对重症脓毒症病人近期预后的预测价值. 蚌埠医学院学报, 2022, 47(9): 1180-1184. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2022.09.006
    [12] 吴迪王璐瑶刘海燕王贵红司磊左正才 . 塞来昔布对强直性脊柱炎病人血清IL-1β、IL-2R及淋巴细胞亚群的影响. 蚌埠医学院学报, 2023, 48(10): 1356-1360. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2023.10.006
    [13] 代应辉李寿玲朱美玲陈逖 . 大鼠高眼压视网膜缺血再灌注损伤形态学改变. 蚌埠医学院学报, 2005, 30(5): 385-387.
    [14] 蒋智慧张俊峰 . 药物后适应保护机制的研究进展. 蚌埠医学院学报, 2011, 36(11): 1287-1289.
    [15] 罗方林钟文亮 . 单磷酰酯A预处理的心肌延迟保护作用与诱导型一氧化氮合酶及蛋白激酶C的关系. 蚌埠医学院学报, 2016, 41(6): 708-711. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2016.06.002
    [16] 徐建国谷荣辉王博文秦志文杜宏洋赵士弟 . Wnt/Ca2+信号通路的生理及病理生理学研究进展. 蚌埠医学院学报, 2023, 48(11): 1617-1621. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2023.11.031
    [17] 吕艳关赵玉杰魏红 . IL-12、IFN-γ、IL-10、IL-4和Th1/Th2在子痫前期孕妇血清中的表达水平及其意义. 蚌埠医学院学报, 2016, 41(6): 805-807. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2016.06.033
    [18] 阮敏黄震琪吴炜梁莉曾庆曙 . 急性髓系白血病并感染病人血清CD64、IL-6、PDW水平与病原菌分布特征、感染预后的关联性. 蚌埠医学院学报, 2022, 47(3): 340-345. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2022.03.017
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出版历程
  • 收稿日期:  2018-02-20
  • 录用日期:  2018-11-01
  • 刊出日期:  2019-01-15

IL-33预处理对小鼠肝脏缺血再灌注损伤的保护作用

    通讯作者: 董传江, 810322077@qq.com
    作者简介: 朱平(1977-), 男, 副主任医师
  • 1. 三峡大学 第一临床医学院肾内科, 湖北 宜昌 443003
  • 2. 三峡大学 第一临床医学院普外科, 湖北 宜昌 443003
  • 3. 三峡大学 第一临床医学院泌尿外科, 湖北 宜昌 443003
基金项目:  湖北省教育厅科研指导项目 B2017-024湖北省自然科学基金项目 2012FFB03708

摘要: 目的探讨白细胞介素(IL)-33预处理在小鼠肝脏缺血再灌注中的作用及可能机制。方法将45只雄性C57BL/6小鼠随机分为3组,每组15只:对照组即肝脏缺血再灌注组(PBS+I/R组),静脉注射等量磷酸盐缓冲液,1 h后分离支配肝脏左、中、尾叶的肝动脉和门静脉及胆管, 应用无损伤微血管夹阻断以上血管60 min;实验组即重组白细胞介素(IL-33)预处理组(rIL-33+I/R组),静脉注射重组IL-33蛋白(每只5 μg),1 h后分离上述血管并夹闭60 min;假手术组(Sham组)小鼠除了不夹闭无损伤微血管夹外其余处理同对照组;每组小鼠再均分为3个亚组,每组5只,分别于再灌注6 h、12 h及24 h检测血清丙氨酸氨基转移酶(ALT)、天门冬氨酸氨基转移酶(AST)及IL-17A水平;另将30只同型小鼠随机分为6组,分别测定不同时段缺血肝脏组织IL-33及髓过氧化物酶(MPO)表达。结果在小鼠肝脏缺血再灌注过程中,IL-33的表达明显升高。再灌注后12 h,PBS+I/R组小鼠血清ALT、AST含量较Sham组明显升高(P < 0.01),rIL-33+I/R组血清ALT、AST含量较PBS+I/R组明显降低(P < 0.01);HE染色提示rIL-33+I/R组肝细胞损伤、中性粒细胞浸润、肝脏组织MPO含量明显低于PBS+I/R组(P < 0.01);ELISA检测血清IL-17A含量提示rIL-33+I/R组明显低于PBS+I/R组(P < 0.01)。结论IL-33在小鼠肝脏缺血再灌注过程中起到保护作用,其机制可能与其抑制IL-17A的表达,减少中性粒细胞浸润有关。

English Abstract

  • 缺血再灌注损伤(ischemia and reperfusion injury, IRI)是指在缺血的基础上恢复血流后,组织器官的损伤反而加重的病理生理现象[1]。肝脏缺血再灌注损伤(liver ischemia and reperfusion injury, LIRI)以肝细胞缺血坏死为特征,临床上主要见于肝部分切除术、肝移植、创伤和低血容量性休克等[2]。但目前临床上针对LIRI的防治仅是支持疗法,因此,寻找防治LIRI的有效手段具有重要临床意义。

    白细胞介素(IL)-33最近被鉴定为孤儿受体ST2(IL-1RLI)的配体,除了表达在淋巴器官的高内皮静脉细胞核外,还组成性地表达于正常人的血管内皮细胞、消化系统的上皮细胞以及淋巴组织纤维细胞[2]。IL-33在疾病中扮演双重角色:它通过增强Th2型反应保护机体免受寄生虫感染和动脉粥样硬化,同时也能加重由Th2细胞和肥大细胞介导的炎症性疾病[3]。但IL-33在肝脏缺血再灌注(I/R)中的作用未见报道。本研究将探讨IL-33在小鼠LIRI中的作用及可能机制。现作报道。

    • 75只雄性SPF级C57BL/6小鼠, 8~10周龄,体质量20~25 g。均购自北京华阜康生物科技有限公司, 按照清洁级动物标准饲养和管理。兔抗小鼠IL-33多克隆抗体购自美国Santa Cruz公司;重组小鼠IL-33蛋白购自北京方程佰金科技有限公司;ALT/AST检测试剂盒购自Sigma公司;髓过氧化物酶(MPO)检测试剂盒购自南京建成生物工程研究所。IL-17A ELISA试剂盒购自Ebioscience公司。本实验使用的其他试剂均为分析纯。

    • 小鼠购进后在SPF级动物房饲养1周,实验前12 h禁食不禁水。将小鼠随机分为3组:假手术组(Sham组)、磷酸盐缓冲液I/R组(PBS+I/R组)及重组IL-33蛋白组(rIL-33+I/R组),每组各15只。以戊巴比妥钠(30 mg/kg)腹腔注射麻醉小鼠,乙醇消毒腹部皮肤,沿腹部正中线切口入腹,在手术显微镜下从周围组织中分离出支配肝脏左、中、尾叶的肝动脉和门静脉及胆管,应用无损伤微血管夹阻断以上血管,造成70%肝脏缺血,缺血部分肝组织颜色由红润转为苍白,提示阻断成功。随后关闭腹腔。缺血60 min后再重新打开腹腔,移走无损伤微血管夹以解除阻断,恢复肝脏血流供应,肝脏颜色在1 min内由苍白变为红润提示再灌注成功。用3/0手术丝线缝合关闭腹腔。Sham组小鼠除了不夹闭无损伤微血管夹外其余处理同I/R组。每组分别于再灌注后6 h、12 h及24 h各时间点处死小鼠,处死前经眼球取血,用预冷的0.9%氯化钠注射液冲洗肝脏,直至变白,切取I/R肝脏组织,分别行生化及形态学检查。

    • 将30只小鼠随机分为6组(Sham组,再灌注后1 h、3 h、6 h、12 h及24 h组)。组织中IL-33表达采用免疫组化SP法检测,操作步骤按试剂盒说明书进行,肝组织石蜡切片经脱蜡、水化、3%甲醇、H2O2避光孵育、高压抗原修复后,加入兔抗小鼠IL-33抗体(1: 400稀释),孵育并洗涤后滴加二抗,光镜下观察控制DAB显色时间,苏木精复染细胞核,梯度乙醇脱水干燥,中性树胶封固。用PBS代替一抗作阴性对照。参考陈杰等[5]研究方法,血清中IL-33表达采用ELISA检测法,根据试剂盒说明书进行。

    • 参考FREITAS等[6-7]预处理方法,PBS+ I/R组于缺血前60 min腹腔注射1 mL PBS溶液;rIL-33+I/R组小鼠于缺血前60 min腹腔注射1 mL的重组rIL-33蛋白溶液(5 μg/mL);Sham组不夹闭无损伤微血管夹,余处理同I/R组。

    • 将小鼠血液标本以3 000 r/min离心10 min,留取上层血清,根据试剂盒说明检测ALT和AST含量。

    • 参考DUAN等[8]研究方法,按不同组在不同时间点处死小鼠取血,室温放置30 min后,4 ℃下2 000 r/min离心分离血清。血清中IL-17A浓度根据试剂盒说明书进行检测。

    • 将小鼠肝脏组织标本经4%多聚甲醛固定,常规石蜡包埋,切片,二甲苯中常规脱蜡至水,苏木精染色10 min,流水冲洗后伊红染色2 min,乙醇脱水,二甲苯透明,中性树胶封固。光镜下观察各组肝脏组织变化。

    • 取I/R后肝脏组织匀浆, 严格按MPO活性测定试剂盒说明书步骤要求, 460 nm波长测量各管吸光度值。根据说明书提供公式, 计算MPO活性数值。

    • 采用方差分析和q检验。

    • 本研究检测了小鼠缺血60 min,再灌注24 h血清中及肝脏组织表达IL-33的情况。小鼠缺血60 min,再灌注3 h后血清中IL-33开始明显升高(P < 0.05),12 h达高峰,24 h后逐渐下降(见图 1)。免疫组化结果显示,IL-33在小鼠缺血60 min,再灌注3 h后表达升高,一直持续至24 h(IL-33阳性细胞显示为棕色)(见图 2)。

      图  1  小鼠肝脏I / R不同时间血清中IL-33的表达

      图  2  IL-33在Sham组及肝脏I/R各时间点表达

    • 小鼠缺血60 min再灌注12 h,PBS+I/R组血清ALT及AST含量明显高于Sham组(P < 0.01)。在缺血60 min,再灌注12 h,rIL-33+I/R组血清中ALT及AST水平明显低于PBS+I/R组(P < 0.01) (见表 1)。

      分组 ALT AST
      Sham组 50.2±18.1 57.2±18.9
      PBS+I/R组 4 842.0±624.1** 5 434.8±1 180.7**
      rIL-33+I/R组 2 789.6±280.8**## 3 542.6±761.2**#
      F 554.93 169.65
      P < 0.01 < 0.01
      MS组内 42 156 225.687 42 657 945.047
      q检验:与Sham组比较**P < 0.01;与PBS+I/R组比较##P < 0.01

      表 1  小鼠I/R 12 h后各组血清ALT及AST变化(ni=15;U/L)

    • HE染色显示Sham组肝组织肝细胞形态正常,肝小叶结构正常(见图 3)。与Sham组相比,PBS+I/R组在缺血60 min再灌注12 h后,肝脏组织结构明显紊乱,肝脏有大面积缺血坏死,肝细胞明显肿胀,变性,坏死区有炎性细胞浸润;rIL-33+I/R组小鼠肝脏损伤较PBS+I/R组明显减轻。

      图  3  小鼠缺血60min, 再灌注12h各组肝脏组织学变化

    • 结果显示:与Sham组相比,PBS+I/R组在缺血60 min,再灌注12 h后肝脏组织MPO含量明显升高(P < 0.01);rIL-33+I/R组较PBS+I/R组在缺血60 min,再灌注12 h后肝脏组织MPO含量明显降低(P < 0.01)(见表 2)。上述结果提示,rIL-33+I/R组较PBS+I/R组在小鼠肝脏缺血60 min,再灌注12 h后中性粒细胞浸润明显减少。

      分组 MPO F P MS组内
      Sham组 9.77±2.13
      PBS+I/R组 23.18±4.31** 31.03 < 0.01 21.744
      rIL-33+I/R组 16.76±6.49**##
      q检验:与Sham组比较**P < 0.01;与PBS+I/R组比较##P < 0.01

      表 2  小鼠I/R 12 h各组肝脏组织MPO含量(ni=15;U/g)

    • 结果显示,小鼠肝脏缺血60 min, 再灌注12 h PBS+I/R组血清中IL-17A含量较Sham组明显升高(P < 0.01), rIL-33+I/R组较PBS+I/R组在小鼠肝脏缺血60 min,再灌注12 h后血清中IL-17A含量明显减少(P < 0.01)(见表 3)。

      分组 IL-17A F P MS 组内
      Sham组 6.68±3.61
      PBS+I/R组 65.44±20.7** 63.08 < 0.01 211.949
      rIL-33+I/R组 26.87±13.94**##
      q检验:与Sham组比较**P < 0.01;与PBS+I/R组比较##P < 0.01

      表 3  小鼠肝脏I/R 12 h血清中IL-17A表达(ni=15;pg/mL)

    • IL-33的mRNA表达于人和鼠的多种器官和细胞。在蛋白水平,IL-33主要表达在成纤维细胞、上皮细胞和内皮细胞[9-10],特别是高内皮小静脉[11]。本研究结果提示在小鼠肝脏I/R模型中,肝细胞也可以表达IL-33,再灌注后12 h达高峰,24 h逐渐降低,提示IL-33参与了小鼠LIRI。我们的预备实验结果提示,提前60 min腹腔注射rIL-33,IRI开始后血清中IL-33浓度最高,因此我们采用提前60 min预处理IL-33,这种预处理方法与FREITAS等[6-7]研究一致。

      IL-33可通过其受体ST2保护小鼠心脏IRI,其保护机制可能与IL-33抑制心肌细胞凋亡有关。有学者进一步研究[12]发现,降低IL-33的表达能加重糖尿病小鼠心脏IRI,其机制可能与IL-33抑制PKCbII激活有关。最近研究[13]发现,IL-33能保护小鼠脑IRI,其机制可能与促进Th2反应,抑制Th17细胞反应有关。但也有研究[14]发现,IL-33能加重顺铂引起的急性肾损伤,其机制可能与IL-33促进CD4+细胞介导的趋化因子CXCL-1的表达有关,可见IL-33具有两面性,它在有些疾病中起保护作用,但在另外一些疾病中起促进作用。但有关IL-33在肝脏I/R中的作用鲜有报道。

      我们的研究结果提示,IL-33能抑制中性粒细胞的浸润而保护LIRI。但IL-33如何抑制中性粒细胞浸润呢?有大量文献报道,IL-17A可促进中性粒细胞的募集而参与炎症的发生、发展。有研究[15]证明,IL-17A基因敲除小鼠能明显抑制中性粒细胞浸润而保护LIRI,提示IL-17A在LIRI过程中趋化中性粒细胞的浸润起关键作用。IL-17A可通过作用于巨噬细胞、内皮细胞、上皮细胞及成纤维细胞,分泌多种趋化因子促进中性粒细胞的浸润[16]。也有研究[17]结果显示,HMGB1可以通过抑制Th17细胞分泌IL-17A,从而抑制中性粒细胞的浸润,而延长心脏移植物的存活,提示IL-17A在中性粒细胞浸润过程中起关键作用。在LIRI过程中,中性粒细胞浸润到肝脏引起肝脏损伤依赖于CD4+T细胞,结果同时显示应用抗体清除CD4+T细胞能抑制中性粒细胞浸润而保护LIRI。CD4基因敲除小鼠能减少中性粒细胞浸润保护LIRI,而且应用抗IL-17抗体中和IL-17后,能通过抑制CXCL2的表达而抑制中性粒细胞浸润,进一步提示CD4+T细胞分泌的IL-17A在LIRI过程中中性粒细胞浸润起到关键作用。

      有学者研究[13]发现,在小鼠脑IRI过程中,IL-33能通过促进Th2型反应而抑制Th17细胞的反应。但在肝脏I/R过程中IL-33对IL-17A引起中性粒细胞浸润的机制未见报道。我们的研究发现,在小鼠I/R过程中,IL-33能够减少中性粒细胞浸润,从而保护小鼠IRI。我们进一步探讨了加用rIL-33IL-17A水平的变化,提示IL-33能抑制IL-17A的表达,与上述研究[13]结果一致。因此,我们推测IL-33通过抑制IL-17A的表达,从而减少中性粒细胞的浸润而保护小鼠IRI。

      DUAN等[8]研究结果提示IL-33在三硝基苯磺酸诱导的小鼠实验性结肠炎中表达升高,而且应用rIL-33预处理能保护小鼠实验性结肠炎。与DUAN等[8]研究结果一致,我们研究发现IL-33在小鼠肝脏I/R 3 h后开始升高,12 h达高峰,研究结果提示IL-33在此过程中发挥保护效应,因此,我们推测IL-33在小鼠I/R过程中表达升高是反馈性的升高,是机体自我调节IRI的机制之一,我们预先给予IL-33可以更好的保护小鼠IRI。我们的研究也进一步证实了上述推测。

      本研究的不足之处在于未用ST2抗体阻断IL-33/ST2信号通路进行研究,因此,本研究结果不能排除IL-33除了ST2受体之外,还可能有其他信号通路参与保护LIRI。同时,本研究也未设置IL-33抗体组进行对比研究,探讨是否加入IL-33抗体后会加重LIRI。以上是本研究的两个不足之处,本课题在以后的研究中将进一步完善。

      综上所述,IL-33能保护小鼠LIRI,其可能机制与IL-33抑制IL-17A表达、从而抑制中性粒细胞浸润有关。

参考文献 (17)

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