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IL-33及其受体ST2对人卵巢癌ES-2细胞增殖、凋亡、迁移和侵袭的影响

缪晨婷 钱静 朱璟

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IL-33及其受体ST2对人卵巢癌ES-2细胞增殖、凋亡、迁移和侵袭的影响

    作者简介: 缪晨婷(1989-), 女, 住院医师
  • 中图分类号: R737.31

Effect of IL-33 and its receptor ST2 on the proliferation, apoptosis, migration and invasion of human ovarian cancer ES-2 cells

  • CLC number: R737.31

  • 摘要: 目的探讨白细胞介素-33(IL-33)及其受体磺基转移酶(ST2)对人卵巢癌ES-2细胞增殖、凋亡、迁移和侵袭的影响。方法采用MTT实验检测IL-33和si-ST2对ES-2人卵巢癌细胞存活率的影响;分为对照组、IL-33组、si-ST2组以及IL-33+si-ST2组,检测各组吸光度值;用流式细胞术检测IL-33和si-ST2对ES-2人卵巢癌细胞凋亡的影响,统计各组细胞凋亡数目;用细胞迁移和侵袭实验检测IL-33和si-ST2对ES-2人卵巢癌细胞迁移、侵袭的影响。结果IL-33组、si-ST2组、IL-33+si-ST2组以及对照组的细胞存活率的比较差异有统计学意义(P < 0.01)。其中IL-33组细胞存活率高于对照组,si-ST2组细胞存活率低于对照组,IL-33+si-ST2组细胞存活率显著高于si-ST2组,IL-33组细胞存活率显著高于si-ST2组,差异均有统计学意义(P < 0.01)。IL-33组细胞凋亡率低于对照组;si-ST2组细胞凋亡率高于对照组和IL-33组;IL-33+si-ST2组细胞凋亡率低于si-ST2组,高于IL-33组。IL-33组、si-ST2组、IL-33+si-ST2组以及对照组的细胞迁移率、侵袭率的比较,差异有统计学意义(P < 0.01)。其中IL-33组细胞迁移、侵袭均低于对照组,si-ST2组迁移、侵袭均高于空白对照组,IL-33+si-ST2组迁移、侵袭均高于IL-33组,低于si-ST2组,差异均有统计学意义(P < 0.01)。结论IL-33可促进卵巢癌ES-2细胞增殖并抑制其凋亡、迁移、侵袭;沉默ST2可抑制卵巢癌ES-2细胞增殖并促进其凋亡,使其迁移和侵袭能力下降;IL-33通过ST2途径参与影响卵巢癌ES-2细胞的增殖、凋亡、迁移和侵袭。
  • 图 1  ES-2细胞凋亡分析

    图 2  ES-2细胞迁移分析

    图 3  ES-2细胞侵袭分析

    表 1  不同组间细胞存活比较(x±s)

    分组 n OD值
    对照组 3 0.75±0.08
    IL-33组 3 1.36±0.04**
    si-ST2组 3 0.43±0.04**△△
    IL-33+si-ST2组 3 0.75±0.02△△##
    F 181.40
    P < 0.01
    MS组内 0.003
    q检验:与对照组比较**P < 0.01;与IL-33组比较△△P < 0.01;与si-ST2组比较##P < 0.01
    下载: 导出CSV

    表 2  ES-2凋亡数据表(%)

    分组 LL
    (活细胞)
    UL
    (碎片及损伤细胞)
    UR
    (晚期凋亡)
    LR
    (早期凋亡)
    凋亡率
    对照组 91.62 1.72 2.44 4.23 6.67
    IL-33组 94.82 1.19 1.47 2.52 3.99**
    si-ST2组 84.97 4.03 5.05 5.95 10.90**△△
    IL-33+si-ST2组 90.47 1.59 2.80 5.14 7.90**△△##
    注:与对照组比较**P < 0.01;与IL-33组比较△△P < 0.01;与si-ST2组比较##P < 0.01
    下载: 导出CSV

    表 3  不同组间细胞迁移率、侵袭率的比较(x±s)

    分组 n 细胞迁移率/% 细胞侵袭率/%
    对照组 3 45.83±4.15 43.06±2.64
    IL-33组 3 22.88±2.36** 13.68±2.46**
    si-ST2组 3 73.71±3.08**△△ 66.59±1.78**△△
    IL-33+si-ST2组 3 56.04±2.82**△△## 49.99±4.19**△△##
    F 134.30 173.60
    P < 0.01 < 0.01
    MS组内 10.058 8.436
    q检验:与对照组比较**P < 0.01;与IL-33组比较△△P < 0.01;与si-ST2组比较##P < 0.01
    下载: 导出CSV
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出版历程
  • 收稿日期:  2020-06-21
  • 录用日期:  2020-10-30
  • 刊出日期:  2020-12-15

IL-33及其受体ST2对人卵巢癌ES-2细胞增殖、凋亡、迁移和侵袭的影响

    作者简介: 缪晨婷(1989-), 女, 住院医师
  • 江苏省苏州市第九人民医院 肿瘤内科, 215200

摘要: 目的探讨白细胞介素-33(IL-33)及其受体磺基转移酶(ST2)对人卵巢癌ES-2细胞增殖、凋亡、迁移和侵袭的影响。方法采用MTT实验检测IL-33和si-ST2对ES-2人卵巢癌细胞存活率的影响;分为对照组、IL-33组、si-ST2组以及IL-33+si-ST2组,检测各组吸光度值;用流式细胞术检测IL-33和si-ST2对ES-2人卵巢癌细胞凋亡的影响,统计各组细胞凋亡数目;用细胞迁移和侵袭实验检测IL-33和si-ST2对ES-2人卵巢癌细胞迁移、侵袭的影响。结果IL-33组、si-ST2组、IL-33+si-ST2组以及对照组的细胞存活率的比较差异有统计学意义(P < 0.01)。其中IL-33组细胞存活率高于对照组,si-ST2组细胞存活率低于对照组,IL-33+si-ST2组细胞存活率显著高于si-ST2组,IL-33组细胞存活率显著高于si-ST2组,差异均有统计学意义(P < 0.01)。IL-33组细胞凋亡率低于对照组;si-ST2组细胞凋亡率高于对照组和IL-33组;IL-33+si-ST2组细胞凋亡率低于si-ST2组,高于IL-33组。IL-33组、si-ST2组、IL-33+si-ST2组以及对照组的细胞迁移率、侵袭率的比较,差异有统计学意义(P < 0.01)。其中IL-33组细胞迁移、侵袭均低于对照组,si-ST2组迁移、侵袭均高于空白对照组,IL-33+si-ST2组迁移、侵袭均高于IL-33组,低于si-ST2组,差异均有统计学意义(P < 0.01)。结论IL-33可促进卵巢癌ES-2细胞增殖并抑制其凋亡、迁移、侵袭;沉默ST2可抑制卵巢癌ES-2细胞增殖并促进其凋亡,使其迁移和侵袭能力下降;IL-33通过ST2途径参与影响卵巢癌ES-2细胞的增殖、凋亡、迁移和侵袭。

English Abstract

  • 卵巢癌发病隐匿、不易察觉,多数病人发现时处于中晚期且伴随转移[1],导致多数病人预后不佳[2]。因此提高卵巢癌的早期诊断极为重要。但由于卵巢癌发病机制不明确,要提高早期诊断,还需从卵巢癌的发生机制入手。炎症在卵巢癌发生、发展中发挥重要作用[3]。白细胞介素(interleukin,IL)是炎性细胞因子重要组成部分,对免疫细胞成熟、增殖、分化等一系列过程具有调节作用。IL-33是IL-1的家族成员,以前体蛋白的形式存在于多种组织细胞核中,磺基转移酶(sulfotransferase,ST2)是IL-33的高亲和力受体[4]。IL-33/ST2信号通路可诱导免疫效应细胞活化,使促癌或抗癌细胞向肿瘤微环境中募集[5]。然而,IL-33在卵巢癌发生、发展的进程机制仍未清楚,是否通过ST2受体发挥作用也未明确。本研究从IL-33从发,探究IL-33/ST2对卵巢癌细胞增殖、凋亡、迁移和侵袭的影响,旨在进一步揭示卵巢癌发生、发展的分子机制,为卵巢癌的临床基础研究提供参考。

    • 人卵巢癌细胞系ES-2细胞购自上海生命科学研究院细胞所;IL-33购自英国Abcam公司;DMEM培养基和胎牛血清均购自美国GIBCO公司;胰蛋白酶、脂质体2000均购自赛默飞世尔有限公司;二甲基亚砜购自美国sigma公司;MTT、Transwell小室、Matrigel基质胶均购自美国Millipore公司;双染细胞凋亡检测试剂购自美国Biolegend公司;青链霉素双抗溶液购自江苏恩莫阿赛生物公司;多聚甲醛和结晶紫染色液均购自碧云天生物公司。

    • 将卵巢癌ES-2细胞培养于DMEM培养基(含10%胎牛血清-青链霉素双抗溶液),置于5%CO2、37 ℃的培养箱内培养,据细胞的生长速率每2天更换培养基,用0.25%的胰蛋白酶每隔2~3 d进行消化、传代,收集对数生长期ES-2细胞。

    • MTT法检测IL-33和si-ST2对ES-2人卵巢癌细胞后的存活率的影响:取处于对数生长期ES-2细胞,用0.25%胰酶消化后,细胞计数,将ES-2细胞种到6板孔中,密度为3×105/孔,分组为:对照组、IL-33组、IL-33+si-ST2组、si-ST2组,IL-33质量浓度60 ng/L、si-ST2用量为每孔50 pmol。转染的步骤按照Lipofectamine 2000的说明书进行操作,24 h后消化细胞,计数,将细胞铺板到96孔板,加入浓度为60 ng/L的IL-33,在检测时间点时,每孔加20 μL MTT溶液(5 mg/mL),在37 ℃、5%CO2培养箱中培养4 h,避免吸去紫色结晶,每孔加150 μL二甲基亚砜,进行10 min低速振荡,使结晶物充分溶解,采用酶联免疫监测仪对波长490 nm时每个孔的吸光度实施测定,每组重复3次,取平均值。

    • 取对数生长期ES-2细胞,0.25%胰蛋白酶消化细胞,调整细胞密度,将ES-2细胞种到6孔板中,孔密度2.5×105,按照分组进行转染si-ST2,转染的步骤按照Lipofectamine 2000的说明书进行操作。转染24 h后,加入60 ng/L的IL-33。48 h后收集细胞,4 ℃预冷PBS洗涤2次,然后用500 μL结合缓冲液重悬细胞,调节其浓度为106/mL,取100 μL细胞悬浮于5 mL流式管中,加入5 μL Annexin V-APC混匀后,加入5 μL Propidiμm Iodide(PI)混匀,于室温避光孵育15 min,采用流式细胞术检测细胞凋亡率。

    • 接种ES-2细胞至24孔板,待细胞贴壁铺满后利用枪头划痕,分别加入IL-33(60 ng/L)、si-ST2(每孔50 pmol)刺激后,分别在0、24 h时间点取样,拍照。在Adobe Illustrator(AI)软件里面量出不同时间不同分组划痕的宽度;细胞迁移率=(0 h细胞间距-24 h细胞间距)/0 h细胞间距×100%。

    • 接种ES-2细胞至Matrigel基质胶(9:1),Matrigel稀释液平铺于Transwell小室上室,下室加入含有10%胎牛血清的培养液(600 μL),上室分别加入IL-33(60 ng/L)、si-ST2(每孔50 pmol)刺激10 h后,去除上层未穿过滤膜的细胞,保留滤膜下层细胞,甲醇固定,结晶紫染色,显微镜视野下拍照细胞计数。

    • 采用t检验和方差分析。

    • IL-33组、si-ST2组、IL-33+si-ST2组以及对照组的细胞存活率的比较,差异有统计学意义(P < 0.01)。其中IL-33组细胞存活率高于对照组(P < 0.01),si-ST2组细胞存活率低于对照组(P < 0.01);但IL-33+si-ST2组细胞存活率与对照组相比差异无统计学意义(P>0.05)。IL-33+si-ST2组细胞存活率显著高于si-ST2组;IL-33组细胞存活率显著高于si-ST2组(P < 0.01)(见表 1)。

      分组 n OD值
      对照组 3 0.75±0.08
      IL-33组 3 1.36±0.04**
      si-ST2组 3 0.43±0.04**△△
      IL-33+si-ST2组 3 0.75±0.02△△##
      F 181.40
      P < 0.01
      MS组内 0.003
      q检验:与对照组比较**P < 0.01;与IL-33组比较△△P < 0.01;与si-ST2组比较##P < 0.01

      表 1  不同组间细胞存活比较(x±s)

    • 对照组、IL-33组、si-ST2组以及IL-33+si-ST2组流式细胞仪结果显示,在ES-2细胞中,IL-33组细胞凋亡率低于对照组;si-ST2组细胞凋亡率高于对照组和IL-33组;IL-33+si-ST2组细胞凋亡率低于si-ST2组,高于IL-33组(见图 1表 2)。

      图  1  ES-2细胞凋亡分析

      分组 LL
      (活细胞)
      UL
      (碎片及损伤细胞)
      UR
      (晚期凋亡)
      LR
      (早期凋亡)
      凋亡率
      对照组 91.62 1.72 2.44 4.23 6.67
      IL-33组 94.82 1.19 1.47 2.52 3.99**
      si-ST2组 84.97 4.03 5.05 5.95 10.90**△△
      IL-33+si-ST2组 90.47 1.59 2.80 5.14 7.90**△△##
      注:与对照组比较**P < 0.01;与IL-33组比较△△P < 0.01;与si-ST2组比较##P < 0.01

      表 2  ES-2凋亡数据表(%)

    • IL-33组、si-ST2组、IL-33+si-ST2组以及对照组的细胞迁移率、侵袭率的比较,差异有统计学意义(P < 0.01),其中IL-33组细胞迁移率、侵袭率均低于对照组,si-ST2组迁移、侵袭均高于对照组,IL-33+si-ST2组迁移、侵袭均高于IL-33组,低于si-ST2组,差异均有统计学意义(P < 0.01)(见图 2图 3表 3)。

      图  2  ES-2细胞迁移分析

      图  3  ES-2细胞侵袭分析

      分组 n 细胞迁移率/% 细胞侵袭率/%
      对照组 3 45.83±4.15 43.06±2.64
      IL-33组 3 22.88±2.36** 13.68±2.46**
      si-ST2组 3 73.71±3.08**△△ 66.59±1.78**△△
      IL-33+si-ST2组 3 56.04±2.82**△△## 49.99±4.19**△△##
      F 134.30 173.60
      P < 0.01 < 0.01
      MS组内 10.058 8.436
      q检验:与对照组比较**P < 0.01;与IL-33组比较△△P < 0.01;与si-ST2组比较##P < 0.01

      表 3  不同组间细胞迁移率、侵袭率的比较(x±s)

    • 肿瘤发展不仅包括癌细胞本身,还有其他相关组成部分,如基质细胞、炎症细胞,特别在卵巢癌腹水和基质交换过程中,会伴随淋巴细胞群的相关因子变化,促进癌细胞生长、扩散[6]。另外癌细胞本身产生的炎性细胞因子也能通过自分泌方式,促进其本身增长,抑制凋亡。可见,炎症似乎和肿瘤的每一步都有关联,包括肿瘤细胞增殖、调亡、迁移、侵袭[7]。因为炎性因子的刺激,会造成线粒体损伤,降低细胞内的抗氧化活性,增加活性氧的产生,破坏生物大分子(DNA、蛋白质),导致正常细胞转化为恶性细胞[8],当细胞的基因发生点突变、缺失或重组,即可诱发肿瘤[9]。IL-33作为新发现的促炎细胞因子,可通过IL-33/ST2信号通路,作用于含有ST2受体的细胞,诱导其分泌相关细胞因子和趋化因子,发挥促增殖作用。有文献[10]表明IL-33和ST2在卵巢肿瘤中表达上调。胡霞等[11]研究表明IL-33可促进食管腺癌细胞的增殖,其机制是IL-33通过IL-33/ST2信号通路,作用于含有ST2受体的细胞,诱导其分泌相关炎性因子,发挥促癌细胞增殖、迁移作用。LI等[12]研究表明IL-33可促进大肠癌细胞的增殖,其机制是IL-33通过其受体ST2发挥作用,同时经NF-κB信号上调环氧化酶2的表达,促进大肠癌细胞的增殖、迁移。这些研究均表明IL-33是通过ST2通路发挥促癌细胞发展作用, 但其在卵巢癌的作用尚不清楚。

      本研究采用MTT实验发现IL-33组细胞存活率高于对照组,si-ST2组细胞存活率低于对照组,IL-33+si-ST2组细胞存活率显著高于si-ST2组;IL-33组细胞存活率显著高于si-ST2组(P < 0.01)。表明了IL-33促进ES-2卵巢癌细胞增殖,si-ST2抑制增殖,转染si-ST2后再加入IL-33处理后,细胞增殖能力恢复。在流式细胞术检测IL-33和si-ST2对ES-2卵巢癌细胞凋亡的影响结果发现,IL-33处理组细胞凋亡率低于对照组;si-ST2组细胞凋亡率高于对照组和IL-33组;IL-33+si-ST2组细胞凋亡率低于si-ST2组,高于IL-33组(P < 0.01)。表明了在卵巢癌ES-2细胞中,IL-33抑制细胞凋亡,si-ST2促进细胞凋亡。本研究的迁移、侵袭实验发现IL-33组细胞迁移率、侵袭率均低于对照组,si-ST2组迁移、侵袭均高于对照组,IL-33处理+si-ST2组迁移、侵袭均高于IL-33处理组,低于si-ST2组(P < 0.01)。IL-33可促进卵巢癌细胞增殖,并可抑制卵巢癌细胞凋亡、迁移和侵袭能力。而沉默ST2可抑制细胞增殖,并促进卵巢癌细胞凋亡、迁移和侵袭能力,ST2沉默处理后再加入IL-33处理,细胞增殖能力恢复,而细胞凋亡、迁移和侵袭能力受到抑制。说明在卵巢癌ES-2细胞中,IL-33对其生物学特性的影响是通过ST2受体途径而实现的。究其原因:IL-33在肿瘤微环境下,被分泌到胞外与受体ST2结合,通过IL-33/ST2信号通路作用于肿瘤微环境中的含有ST2受体的细胞,诱导其分泌相关细胞因子和趋化因子[13]。同时将信号转到细胞内,把MyD88蛋白招募过来[14],并通过MyD88通路的IRAK1、IRAK4和TRAF6,降解IκB蛋白(NF-κB的抑制性蛋白),随后激活NF-κB、MAPK、p38以及c-Jun氨基末端激酶(c-Jun N-terminal kinase, JNK)和细胞外调节激酶(extracellular regulated protein kinases, ERK)[13, 15],同时激活下游转录因子激活子蛋白-1(Activator protein 1, AP-1)。NF-κB是一种可与免疫球蛋白κ轻链基因增强子κB序列特异性结合的核蛋白因子[16],具有多向性转录调节作用,当活化的NF-κB与相应κB序列结合后,启动和调节增殖相关基因的转录;MAPK通路是细胞增殖、凋亡等信号的转导途径;而p38途径通过上调某些转录因子基因的表达,则会影响癌细胞的增殖,JNK途径中活化的JNK与激活转录因子2(ATF2)及c-Jun的氨基末端区域结合,使转录因子的活性区域发生磷酸化[17],JNK的同二聚体或异二聚体与基因启动子上的AP-1位点结合,提高AP-1转录活性,促进基因表达和蛋白质的合成,使内皮细胞活化,肿瘤细胞更容易穿透内皮,介导细胞与细胞间、或细胞与基质间相互接触或结合,从而参与肿瘤迁移、侵袭等过程。这也说明了IL-33是可促进卵巢癌细胞增殖,但ST2沉默后,IL-33无法与ST2受体结合发挥促增殖作用,因此si-ST2属促进卵巢癌细胞凋亡。

      综上,IL-33可促进卵巢癌ES-2细胞增殖并抑制其凋亡、迁移、侵袭,沉默ST2可抑制卵巢癌ES-2细胞增殖并促进其凋亡, 使其迁移和侵袭能力下降,ST2沉默处理后再加入IL-33处理,细胞增殖能力恢复,但细胞凋亡、迁移和侵袭能力受到抑制。IL-33通过ST2途径参与影响卵巢癌ES-2细胞的增殖、凋亡、迁移和侵袭。

参考文献 (17)

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