• 中国科技论文统计源期刊
  • 中国科技核心期刊
  • 中国高校优秀期刊
  • 安徽省优秀科技期刊

留言板

尊敬的读者、作者、审稿人, 关于本刊的投稿、审稿、编辑和出版的任何问题, 您可以本页添加留言。我们将尽快给您答复。谢谢您的支持!

姓名
邮箱
手机号码
标题
留言内容
验证码

二十二碳六烯酸介导MAPK途径抗房颤的作用及机制研究

徐庆梅 莫辰 朱飞宇 张恒 王洪巨 高琴 康品方 唐碧

引用本文:
Citation:

二十二碳六烯酸介导MAPK途径抗房颤的作用及机制研究

    作者简介: 徐庆梅(1995-), 女, 硕士研究生
    通讯作者: 康品方, kangpinfang.1016@163.com ; 唐碧, bitang2000@163.com
  • 基金项目:

    蚌埠医学院研究生科研创新计划 Byycx1918

    国家自然科学基金面上项目 81970313

    安徽省教育厅重大项目 KJ2018ZD023

    安徽省自然科学基金青年项目 1908085QH353

  • 中图分类号: R541.75

Study on the effects and mechanism of MAPK pathway mediated by docosahexaenoic acid against atrial fibrillation

    Corresponding author: KANG Pin-fang, kangpinfang.1016@163.com ;TANG Bi, bitang2000@163.com
  • CLC number: R541.75

  • 摘要: 目的探讨二十二碳六烯酸(DHA)通过影响P38 MAPK途径调控胶原表达发挥抗房颤作用可能的机制。方法将80只对乙酰胆碱(66 μg/mL)-氯化钙(50 mg/mL)混合液敏感的SD大鼠随机分为对照组(CON组)、对照DHA处理组(DHA组)、房颤组(AF组)和房颤DHA处理组(DHA+AF组),每组20只复制大鼠房颤模型。BL-420F描记心电图、连续双刺激法测定心房有效不应期(effective refractory period,ERP)、全细胞膜片钳技术记录心房肌细胞动作电位时程(action potential duration,APD)变化,酶免疫吸附法(ELISA)检测大鼠心房肌组织Ⅰ型、Ⅲ型胶原表达情况,蛋白印迹检测P38、P-P38及MKP-1表达情况。结果大鼠房颤持续时间随实验时间增加而逐渐延长,而DHA可以缩短房颤持续时间(P < 0.05~P < 0.01)。AF组大鼠心房ERP、APD明显缩短、DHA可明显延长大鼠心房ERP、APD(P < 0.01);各组P38表达无明显变化,与CON组相比,AF组大鼠P-P38表达水平明显升高,MKP-1表达明显下降(P < 0.01);与AF组相比,DHA+AF组P-P38表达水平明显降低,MKP-1表达明显增加(P < 0.01)。ELISA结果证实,DHA可明显下调大鼠心房肌组织Ⅰ型、Ⅲ型胶原表达(P < 0.01)。结论DHA可能通过调控P38 MAPK信号转导通路介导胶原表达发挥抗房颤作用。
  • 图 1  大鼠尾静脉注射乙酰胆碱-氯化钙混合液前后标准II导联心电图

    表 1  AF组与DHA+AF组大鼠AF持续时间比较(x±sni=10)

    分组 第3天 第4天 第10天 第17天
    AF组 6.20±1.6 11.8±3.1 28.8±2.4 41.0±2.7
    DHA+AF组 7.40±1.1 9.20±1.8 16.6±2.5 17.6±1.7
    t 1.95 2.29 11.13 23.19
    P >0.05 < 0.05 < 0.01 < 0.01
    下载: 导出CSV

    表 2  各组大鼠心房肌ERP比较(x±sni=12)

    分组 ERP/ms F P MS组内
    CON组 80.0±2.6## 424.99 < 0.01 6.055
    AF组 60.3 ±1.5**
    DHA组 95.7±1.5**##
    DHA+AF组 83.0±3.6**##▲▲
    q检验:与CON组比较**P<0.01;与AF组比较##P<0.01;与DHA组比较▲▲P<0.01
    下载: 导出CSV

    表 3  DHA对大鼠心房肌细胞APD50的影响(x±sni=24)

    分组 APD50 F P MS组内
    CON组 0.99±0.08##▲▲ 86.74 < 0.01 0.006
    AF组 1.22 ±0.10**##
    DHA组 0.88±0.04**▲▲
    DHA+AF组 1.08±0.07**##▲▲
    q检验:与CON组比较**P<0.01;与AF组比较##P<0.01;与DHA组比较▲▲P<0.01
    下载: 导出CSV

    表 4  DHA对大鼠心房肌细胞APD90的影响(x±sni=24)

    分组 APD90 F P MS组内
    CON组 0.99±0.07##▲▲ 129.50 < 0.01 0.006
    AF组 0.81±0.06**##▲▲
    DHA组 1.20 ±0.08**##
    DHA+AF组 1.15±0.09**##
    q检验:与CON组比较**P<0.01;与AF组比较##P<0.01;与DHA组比较▲▲P<0.01
    下载: 导出CSV

    表 5  DHA对大鼠心房肌Ⅰ型胶原表达的影响(x±sni=12)

    分组 Ⅰ型胶原水平/(μg/L) F P MS组内
    CON组 40.6±8.8##▲▲ 85.58 < 0.01 31.133
    AF组 63.3±4.8**▲▲
    DHA组 27.2±3.8**##
    DHA+AF组 43.9±3.1##▲▲
    q检验:与CON组比较**P<0.01;与AF组比较##P<0.01;与DHA组比较▲▲P<0.01
    下载: 导出CSV

    表 6  DHA对大鼠心房肌Ⅲ型胶原表达的影响(x±sni=12)

    分组 Ⅲ型胶原水平(μg/L) F P MS组内
    CON组 4.89±0.85## 12.58 < 0.01 1.841
    AF组 6.97±0.91**▲▲
    DHA组 3.66 ±2.17##
    DHA+AF组 4.67±1.05##
    q检验:与CON组比较**P<0.01;与AF组比较##P<0.01;与DHA组比较▲▲P<0.01
    下载: 导出CSV

    表 7  DHA对大鼠心房肌组织P-P38和P38蛋白表达的影响(x±sni=12)

    分组 P-P38/P38 F P MS组内
    CON组 0.60±0.05## 3.03 < 0.05 0.054
    AF组 0.82±0.04**▲▲
    DHA组 0.56 ±0.46##
    DHA+AF组 0.71±0.03**##▲▲
    q检验:与CON组比较**P<0.01;与AF组比较##P<0.01;与DHA组比较▲▲P<0.01
    下载: 导出CSV

    表 8  DHA对大鼠心房肌组织MKP-1蛋白表达的影响(x±sni=12)

    项目分组 MKP-1/β-actin F P MS组内
    CON组 0.70±0.06##▲▲ 125.90 < 0.01 0.003
    AF组 0.46±0.04**▲▲
    DHA组 0.87 ±0.06**##
    DHA+AF组 0.75±0.05##▲▲
    q检验:与CON组比较**P<0.01;与AF组比较##P<0.01;与DHA组比较▲▲P<0.01
    下载: 导出CSV
  • [1] MORAN PS, TELJEUR C, RYAN M, et al. Systematic screening for the detection of atrial fibrillation[J]. Cochrane Database Syst Rev, 2016, 6(6): CD009586.
    [2] KONG P, CHRISTIA P, FRANGOGIANNIS N G. The pathogenesis of cardiac fibrosis[J]. Cell Mol Life Sci, 2014, 71(4): 549. doi: 10.1007/s00018-013-1349-6
    [3] VERHEULE S. Increased vulnerability to atrial fibrillation in transgenic mice with selective atrial fibrosis caused by overexpression of TGF-β1[J]. Circ Res, 2004, 94(11): 1458. doi: 10.1161/01.RES.0000129579.59664.9d
    [4] ABDELHAMID AS, MARTIN N, BRIDGES C, et al. Polyunsaturated fatty acids for the primary and secondary prevention of cardiovascular disease[J]. Cochrane Database Syst Rev, 2018, 7(7): CD012345.
    [5] COLUSSI GL, CATENA C, FAGOTTO V, et al. Atrial fibrillation and its complications in arterial hypertension: The potential preventive role of ω-3 polyunsaturated fatty acids[J]. Crit Rev Food Sci Nutr, 2019, 59(12): 1937. doi: 10.1080/10408398.2018.1434126
    [6] SUN Y, LIU WZ, LIU T, et al. Signaling pathway of MAPK/ERK in cell proliferation, differentiation, migration, senescence and apoptosis[J]. J Recept Signal Transduct Res, 2015, 35(6): 1.
    [7] LIU F, FENG XX, ZHU SL, et al. Sonic Hedgehog signaling pathway mediates proliferation and migration of fibroblast-like synoviocytes in rheumatoid arthritis via MAPK/ERK signaling pathway[J]. Front Immunol, 2018, 5(9): 2847.
    [8] 陈春林, 巩甜甜, 汤依群, 等. SD大鼠房颤模型的建立[J]. 实验动物科学, 2009, 26(3): 5. doi: 10.3969/j.issn.1006-6179.2009.03.002
    [9] NATTEL S. Molecular and cellular mechanisms of atrial fibrosis in atrial fibrillation[J]. JACC Clin Electrophysiol, 2017, 3(5): 425. doi: 10.1016/j.jacep.2017.03.002
    [10] SOHNS C, MARROUCHE NF. Atrial fibrillation and cardiac fibrosis[J]. Eur Heart J, 2020, 41(10): 1123. doi: 10.1093/eurheartj/ehz786
    [11] HE K, LIU K, DAVIGLUS ML, et al.Associations of dietary long-chain n-3 polyunsaturated fatty acids and fish with biomarkers of inflammation and endothelial activation (from the multi-ethnic study of atherosclerosis[MESA])[J].Am J Cardiol, 2009, 103(9): 1238.
    [12] MOZAFFARIAN D. Fish intake and risk of incident atrial fibrillation[J]. Circulation, 2004, 110(4): 368. doi: 10.1161/01.CIR.0000138154.00779.A5
    [13] RAMADEEN A, CONNELLY KA, LEONG-POI H, et al. Docosahexaenoic acid, but not eicosapentaenoic acid, supplementation reduces vulnerability to atrial fibrillation[J]. Circ: Arrhythm Electrophysiol, 2012, 5(5): 978. doi: 10.1161/CIRCEP.112.971515
    [14] CHI H, BARRY SP, ROTH RJ, et al. Dynamic regulation of pro- and anti-inflammatory cytokines by MAPK phosphatase 1(MKP-1) in innate immune responses[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2006, 103(7): 2274. doi: 10.1073/pnas.0510965103
    [15] SAINI A, SHARPLES AP, Al-SHANTI N, et al. Omega-3 fatty acid EPA improves regenerative capacity of mouse skeletal muscle cells exposed to saturated fat and inflammation[J]. Biogerontology, 2017, 18(1): 109. doi: 10.1007/s10522-016-9667-3
    [16] ENGELBRECHT AM, ENGELBRECHT P, GENADE S, et al. Long-chain polyunsaturated fatty acids protect the heart against ischemia/reperfusion-induced injury via a MAPK dependent pathway[J]. J Mol Cell Cardiol, 2005, 39(6): 940. doi: 10.1016/j.yjmcc.2005.08.004
    [17] ASCHAR-SOBBI R, IZADDOUSTDAR F, KOROGYI AS, et al. Increased atrial arrhythmia susceptibility induced by intense endurance exercise in mice requires TNFα[J]. Nat Commun, 2015, 19(6): 6018.
    [18] 单锋, 葛敏, 唐碧, 等. 二十二碳六烯酸对房颤大鼠心房纤维化的影响[J]. 蚌埠医学院学报, 2018, 43(4): 29.
    [19] WIJFFELS MC, KIRCHHOF CJ, DORLAND R, et al. Atrial fibrillation begets atrial fibrillation: a study in awake chronically instrumented goat[J]. Circulation, 1995, 92(7): 1954. doi: 10.1161/01.CIR.92.7.1954
  • [1] 单锋葛敏唐碧侯秀杰高琴关宿东 . 二十二碳六烯酸对房颤大鼠心房纤维化的影响. 蚌埠医学院学报, 2018, 43(4): 444-449. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2018.04.007
    [2] 唐碧高大胜侯秀杰史晓俊王洪巨单锋 . 二十二碳六烯酸下调心房颤动大鼠心房肌细胞双孔内向整流相关性钾通道-1的表达. 蚌埠医学院学报, 2014, 39(8): 1001-1005.
    [3] 唐碧徐庆梅朱飞宇莫辰张恒宣玲汤阳王闯康品方 . Cdc42及YAP检测对非瓣膜性心房颤动诊断的相关性研究. 蚌埠医学院学报, 2021, 46(10): 1349-1353. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2021.10.006
    [4] 王洪巨唐碧康品方 . 二十二碳六烯酸对低氧性肺动脉高压大鼠肺动脉平滑肌细胞凋亡的影响. 蚌埠医学院学报, 2015, 39(7): 851-853. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2015.07.004
    [5] 雷思思姚卓亚卢园园张恒赖薇薇李辉康品方徐家丽 . NFATc1、MAPK及CTGF在心房颤动病人外周血中的表达及临床意义. 蚌埠医学院学报, 2022, 47(5): 585-588. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2022.05.006
    [6] 谭树宣程颖谯王莉华 . 心房颤动150例临床分析. 蚌埠医学院学报, 2008, 33(5): 565-566.
    [7] 程仁力王志荣张澍黄利军黄涛谢后田孙彤 . 心房颤动患者左心房血栓形成机制的初步研究. 蚌埠医学院学报, 2012, 36(9): 1053-1055,1058.
    [8] 王敬 . 血液透析诱发心房颤动的临床特点及治疗分析. 蚌埠医学院学报, 2011, 36(10): 1094-1096.
    [9] 周晓娟张理想詹玲尹丹丹 . 心房颤动病人焦虑抑郁状况及影响因素分析. 蚌埠医学院学报, 2019, 44(7): 876-880. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2019.07.009
    [10] 朱春丽孙艳华朱正芳 . 胺碘酮治疗高血压伴急性快速心房颤动的临床观察. 蚌埠医学院学报, 2010, 35(4): 399-400.
    [11] 程仁力黄涛张澍黄利军孙彤谢后田 . 超敏C反应蛋白和心房颤动的关系. 蚌埠医学院学报, 2011, 36(12): 1357-1358,1361.
    [12] 贾蕾蕾卢家忠李增 . Ghrelin与心房颤动的相关性研究. 蚌埠医学院学报, 2018, 43(12): 1558-1560. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2018.12.005
    [13] 宋莹莹林紫薇丁苗苗王俊茂翟红丽胡飞龙张伶俐 . 住院老年心房颤动病人衰弱状态及影响因素分析. 蚌埠医学院学报, 2021, 46(10): 1365-1369. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2021.10.010
    [14] 戴志江 . 胺碘酮治疗急性冠状动脉综合征并发快速心房颤动的疗效观察. 蚌埠医学院学报, 2012, 36(8): 939-941.
    [15] 王超黎敬锋李世光王厚阳陆明奎陈良余 . 静脉注射伊布利特转复心房扑动或心房颤动14例疗效分析. 蚌埠医学院学报, 2012, 36(9): 1043-1044.
    [16] 王茂林宣玲唐碧吴士礼周丽平包宗明 . 环孢素A对心房颤动大鼠心房有效不应期及血清中MMP-2、TIMP-2水平的影响. 蚌埠医学院学报, 2014, 38(2): 141-144.
    [17] 徐玉原 . 冠心病心房颤动病人血浆D-D、Fg水平与左心房大小的相关性分析. 蚌埠医学院学报, 2023, 48(2): 226-229. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2023.02.021
    [18] 王平李林 . 3D-STI技术在评价阵发性心房颤动合并高血压病人左心房功能中的价值. 蚌埠医学院学报, 2023, 48(9): 1274-1277. doi: 10.13898/j.cnki.issn.1000-2200.2023.09.022
    [19] 陈以强桑更生崔勇陆江辉袁志华 . 急性心肌梗死并发心房颤动与冠状动脉病变的相关性. 蚌埠医学院学报, 2006, 31(5): 485-486.
    [20] 杨劼张以政赵胜朱铁兵 . 胺碘酮转复冠状动脉旁路移植术后并发心房颤动的疗效观察. 蚌埠医学院学报, 2007, 32(4): 453-454.
  • 加载中
图(1)表(8)
计量
  • 文章访问数:  3659
  • HTML全文浏览量:  2043
  • PDF下载量:  31
  • 被引次数: 0
出版历程
  • 收稿日期:  2020-03-01
  • 录用日期:  2020-10-01
  • 刊出日期:  2021-01-15

二十二碳六烯酸介导MAPK途径抗房颤的作用及机制研究

    通讯作者: 康品方, kangpinfang.1016@163.com
    通讯作者: 唐碧, bitang2000@163.com
    作者简介: 徐庆梅(1995-), 女, 硕士研究生
  • 1. 蚌埠医学院第一附属医院 心血管科, 安徽 蚌埠 233004
  • 2. 蚌埠医学院 生理学教研室, 安徽 蚌埠 233030
  • 3. 蚌埠医学院 心脑血管研究中心, 安徽 蚌埠 233030
基金项目:  蚌埠医学院研究生科研创新计划 Byycx1918国家自然科学基金面上项目 81970313安徽省教育厅重大项目 KJ2018ZD023安徽省自然科学基金青年项目 1908085QH353

摘要: 目的探讨二十二碳六烯酸(DHA)通过影响P38 MAPK途径调控胶原表达发挥抗房颤作用可能的机制。方法将80只对乙酰胆碱(66 μg/mL)-氯化钙(50 mg/mL)混合液敏感的SD大鼠随机分为对照组(CON组)、对照DHA处理组(DHA组)、房颤组(AF组)和房颤DHA处理组(DHA+AF组),每组20只复制大鼠房颤模型。BL-420F描记心电图、连续双刺激法测定心房有效不应期(effective refractory period,ERP)、全细胞膜片钳技术记录心房肌细胞动作电位时程(action potential duration,APD)变化,酶免疫吸附法(ELISA)检测大鼠心房肌组织Ⅰ型、Ⅲ型胶原表达情况,蛋白印迹检测P38、P-P38及MKP-1表达情况。结果大鼠房颤持续时间随实验时间增加而逐渐延长,而DHA可以缩短房颤持续时间(P < 0.05~P < 0.01)。AF组大鼠心房ERP、APD明显缩短、DHA可明显延长大鼠心房ERP、APD(P < 0.01);各组P38表达无明显变化,与CON组相比,AF组大鼠P-P38表达水平明显升高,MKP-1表达明显下降(P < 0.01);与AF组相比,DHA+AF组P-P38表达水平明显降低,MKP-1表达明显增加(P < 0.01)。ELISA结果证实,DHA可明显下调大鼠心房肌组织Ⅰ型、Ⅲ型胶原表达(P < 0.01)。结论DHA可能通过调控P38 MAPK信号转导通路介导胶原表达发挥抗房颤作用。

English Abstract

  • 心房颤动(atrial fibrillation,AF)简称房颤,主要表现为心脏迅速而又不规则地跳动,是临床上最常见的一种心律失常,其发病率及致死率居高不下,危害性堪比恶性肿瘤,严重影响病人的生命质量[1]。心房纤维化的特征在于心肌成纤维细胞异常增殖所致的心肌细胞外基质(extracellular matrix, ECM)的异常积累[2],它作为AF发生的触发器,可引起心房电传导异常,更易形成折返,有利于AF的发作和维持,是AF发生、发展的病理基础[3]。二十二碳六烯酸(docosahexaenoic acid, DHA)属于ω-3多不饱和脂肪酸家族中的重要成员,在膳食鱼类中广泛存在。研究[4]表明,增加多不饱和脂肪酸的摄入可有效降低冠心病和心血管疾病事件发生的风险。最新研究[5]也证实,多不饱和脂肪酸可发挥抗AF的作用。丝裂原激活蛋白激酶磷酸酶(mitogen activates protein kinase phosphatase, MKP-1)是一种苏氨酸/酪氨酸磷酸酯酶,可调控丝裂原激活蛋白激酶(mitogen activated protein kinase,MAPKs)及P38磷酸化状态。正常情况下,MAPKs和MKP-1处于动态平衡状态,这种平衡状态在决定细胞生存或凋亡方面起重要作用[6]。另有研究[7]发现, MAPK通路可介导成纤维细胞的增殖和迁移。而DHA是否通过影响P38 MAPK通路发挥抗AF的作用尚未见报道。本研究观察DHA对大鼠心房纤维化的影响,并探讨该作用是否与调控P38 MAPK通路介导的胶原表达有关。

    • SD雄性大鼠80只,体质量(220±20)g,由蚌埠医学院实验动物中心提供。氯化乙酰胆碱购于Sigma公司,单克隆鼠抗P38、P-P38、MKP-1抗体及β-actin抗体均购于Santa Cruz公司,单克隆二抗购自武汉博士德公司;大鼠Ⅰ型、Ⅲ型胶原ELISA试剂盒购于上海慧嘉生物公司,PBS购于Hyclone公司,其余试剂均为国产分析纯级别。MedLab生物信号采集处理系统(U/4C501H)购于南京美易科技有限公司,低温高速离心机(5810R)于德国Eppendor公司购买,膜片钳相关仪器设备由美国Axon公司提供,免疫印迹配套设备购于美国BIO-RAD公司。

    • 雄性SD大鼠适应性喂养1周后,尾静脉注射[8]66 μg/mL乙酰胆碱与50 mg/mL氯化钙混合液,心电图(标准Ⅱ导联)全程记录。剔除乙酰胆碱-氯化钙混合液不敏感大鼠,最终选择80只,随机分为对照组(CON组)、对照DHA处理组(DHA组)、AF组和AF+DHA处理组(DHA+AF组),每组20只。

    • AF模型组连续3 d尾静脉注射乙酰胆碱-氯化钙混合液,每天给药1次,Ⅱ导心电图显示P波消失、出现f波的典型AF心电图视为模型复制成功[8]

    • 第4天开始,CON组给予0.9%氯化钠溶液,DHA组给予DHA溶液(10 mg/mL)和0.9%氯化钠溶液,AF组给予0.9%氯化钠溶液和乙酰胆碱-氯化钙混合液,DHA+AF组给予DHA溶液和乙酰胆碱-氯化钙混合液,给药方式均为尾静脉注射,给药剂量均为0.1 mL/100 g,每天给药1次,连续14 d。

    • 参照陈春林团队的建模方法[8],实验第3、4、10、17天记录给药前后心电图,以P波消失、f波出现为AF发生标志;窦性心律恢复、P波复现、f波消失为AF终止标志,AF发生至终止所持续的时间即为AF持续时间。

    • 实验第18天,脱颈法处死SD大鼠后,迅速开胸取出心脏,剪取左心房肌条固定于持续通以混合气体(95%O2+5%CO2)的含有K-H液的浴槽,调节前负荷为1g,稳定40 min,采用连续双刺激法测定心房肌ERP。

    • 采用改良的酶解法分离出大鼠心房肌细胞,选取富有活力、静止、杆状、横纹清晰的细胞,应用电流钳方法引发心肌细胞动作电位,全细胞膜片钳技术记录复极50%时的动作电位时程(APD50)、复极90%时的动作电位时程(APD90)。

    • 剪取的心房组织剪碎后置于研钵中,加入1 mL 4 ℃预冷的PBS快速研磨至未见明显的组织块,2 000 min,离心10 min后取上清,按照试剂盒中的方法,使用酶标仪在450 nm波长下检测并记录各组OD值。

    • 提取心房组织总蛋白,使用BCA法蛋白定量后,经SDS-PAGE凝胶电泳、湿转法转膜、5%脱脂奶粉封闭、分别用单克隆抗体P38(1∶500)、P- P38(1∶500)、MKP-1(1∶500)4 ℃孵育过夜、二抗(1∶1 000)室温孵育1 h后ECL显色照相。采用Bio-Rad quantity one对目的条带进行半定量分析。

    • 采用t检验、方差分析和q检验。

    • 大鼠尾静脉注射乙酰胆碱-氯化钙混合液1~2 s后即出现典型的AF心电图(见图 1)。

      图  1  大鼠尾静脉注射乙酰胆碱-氯化钙混合液前后标准II导联心电图

    • CON组和DHA组尾静脉注射0.9%氯化钠溶液,给药前后心电图无明显变化,未见典型AF心电图。AF组和DHA+AF组通过观察心电图,结果显示随着实验时间的增加,AF大鼠的AF持续时间逐渐延长,实验第4、10、17天,与AF组相比,DHA+AF组大鼠AF持续时间明显缩短(P<0.05~P<0.01)(见表 1)。

      分组 第3天 第4天 第10天 第17天
      AF组 6.20±1.6 11.8±3.1 28.8±2.4 41.0±2.7
      DHA+AF组 7.40±1.1 9.20±1.8 16.6±2.5 17.6±1.7
      t 1.95 2.29 11.13 23.19
      P >0.05 < 0.05 < 0.01 < 0.01

      表 1  AF组与DHA+AF组大鼠AF持续时间比较(x±sni=10)

    • 与CON组大鼠相比,AF组ERP明显缩短,DHA组及DHA+AF ERP组延长(P<0.01);与AF组相比,DHA+AF组大鼠ERP明显延长(P<0.01)(见表 2)。

      分组 ERP/ms F P MS组内
      CON组 80.0±2.6## 424.99 < 0.01 6.055
      AF组 60.3 ±1.5**
      DHA组 95.7±1.5**##
      DHA+AF组 83.0±3.6**##▲▲
      q检验:与CON组比较**P<0.01;与AF组比较##P<0.01;与DHA组比较▲▲P<0.01

      表 2  各组大鼠心房肌ERP比较(x±sni=12)

    • 与CON组相比,AF组大鼠心房肌细胞APD50和APD90明显缩短(P<0.01),DHA组与DHA+AF组延长(P<0.01);与AF组相比,DHA+AF组大鼠心房肌细胞APD50和APD90延长(P<0.01)(见表 34)。

      分组 APD50 F P MS组内
      CON组 0.99±0.08##▲▲ 86.74 < 0.01 0.006
      AF组 1.22 ±0.10**##
      DHA组 0.88±0.04**▲▲
      DHA+AF组 1.08±0.07**##▲▲
      q检验:与CON组比较**P<0.01;与AF组比较##P<0.01;与DHA组比较▲▲P<0.01

      表 3  DHA对大鼠心房肌细胞APD50的影响(x±sni=24)

      分组 APD90 F P MS组内
      CON组 0.99±0.07##▲▲ 129.50 < 0.01 0.006
      AF组 0.81±0.06**##▲▲
      DHA组 1.20 ±0.08**##
      DHA+AF组 1.15±0.09**##
      q检验:与CON组比较**P<0.01;与AF组比较##P<0.01;与DHA组比较▲▲P<0.01

      表 4  DHA对大鼠心房肌细胞APD90的影响(x±sni=24)

    • 与CON组相比,AF组Ⅰ型、Ⅲ型胶原表达明显增高(P<0.01),DHA组Ⅰ型、Ⅲ型胶原表达明显降低(P<0.01);与AF组相比,DHA、DHA+AF组Ⅰ型、Ⅲ型胶原表达均明显降低(P<0.01)(见表 56)。

      分组 Ⅰ型胶原水平/(μg/L) F P MS组内
      CON组 40.6±8.8##▲▲ 85.58 < 0.01 31.133
      AF组 63.3±4.8**▲▲
      DHA组 27.2±3.8**##
      DHA+AF组 43.9±3.1##▲▲
      q检验:与CON组比较**P<0.01;与AF组比较##P<0.01;与DHA组比较▲▲P<0.01

      表 5  DHA对大鼠心房肌Ⅰ型胶原表达的影响(x±sni=12)

      分组 Ⅲ型胶原水平(μg/L) F P MS组内
      CON组 4.89±0.85## 12.58 < 0.01 1.841
      AF组 6.97±0.91**▲▲
      DHA组 3.66 ±2.17##
      DHA+AF组 4.67±1.05##
      q检验:与CON组比较**P<0.01;与AF组比较##P<0.01;与DHA组比较▲▲P<0.01

      表 6  DHA对大鼠心房肌Ⅲ型胶原表达的影响(x±sni=12)

    • 各组P38表达无明显变化,与CON组相比,DHA组P-P38表达明显下降,MKP-1表达明显增加(P<0.01);AF组P-P38表达明显增高,MKP-1表达明显降低(P<0.01);与AF组相比,DHA+AF组P-P38表达明显下降,MKP-1表达明显增加(P<0.01)(见表 78)。

      分组 P-P38/P38 F P MS组内
      CON组 0.60±0.05## 3.03 < 0.05 0.054
      AF组 0.82±0.04**▲▲
      DHA组 0.56 ±0.46##
      DHA+AF组 0.71±0.03**##▲▲
      q检验:与CON组比较**P<0.01;与AF组比较##P<0.01;与DHA组比较▲▲P<0.01

      表 7  DHA对大鼠心房肌组织P-P38和P38蛋白表达的影响(x±sni=12)

      项目分组 MKP-1/β-actin F P MS组内
      CON组 0.70±0.06##▲▲ 125.90 < 0.01 0.003
      AF组 0.46±0.04**▲▲
      DHA组 0.87 ±0.06**##
      DHA+AF组 0.75±0.05##▲▲
      q检验:与CON组比较**P<0.01;与AF组比较##P<0.01;与DHA组比较▲▲P<0.01

      表 8  DHA对大鼠心房肌组织MKP-1蛋白表达的影响(x±sni=12)

    • AF是一种进行性、自我持续性心律失常,AF及其并发症成为一个日益严重的临床问题[9]。本实验通过复制AF模型发现:与CON组相比,AF组大鼠AF持续时间随实验时间增加而逐渐延长,心房ERP、APD50及APD90明显缩短,心房组织P-P38蛋白、Ⅰ型及Ⅲ型胶原表达水平明显升高,MKP-1表达下降;DHA干预组AF持续时间较AF组明显缩短,以实验第10、17天尤为显著,在有效延长心房ERP、APD50及APD90的同时还下调了P-P38、Ⅰ型及Ⅲ型胶原表达水平,而MKP-1水平较前增加。这些结果表明,DHA可能通过调控P38 MAPK通路发挥抗AF作用。

      AF的一个显著特征是心房结构重构,而心房纤维化的形成是导致AF病人心房结构重构的主要因素之一。研究证实[10],ECM参与了心房重塑过程,心脏成纤维细胞分泌的胶原在ECM的形成中起着关键作用。多种胶原在ECM中表达并参与促纤维化反应,Ⅰ型胶原约占心肌胶原的80%~90%,Ⅲ型胶原则与AF复发率独立相关,当组织受到刺激时,心肌成纤维细胞过度增殖,各型胶原合成和分泌增加,降解减少,发生胶原过度聚集,即ECM重构[10]。本研究发现,与CON组相比,AF组大鼠Ⅰ型、Ⅲ型胶原表达明显增高,提示AF的发生伴随着心肌纤维化程度加重;与AF组相比,给予DHA治疗后,大鼠心房Ⅰ型、Ⅲ型胶原表达显著降低,提示DHA可通过改善胶原成分比例减轻纤维化,抑制心房重构。

      2009年的一项研究[11]表明,鱼油补充剂中的DHA不仅有助于健康人群的心血管疾病预防,而且可减少心脏病病人的心脏事件和死亡率。近年来,DHA在防治AF方面的作用日益受到关注。流行病学随访研究发现,膳食鱼类的人群与AF的低发病率密切相关[12], RAMADEEN等[13]在狗的AF模型中的研究发现DHA可以降低心房纤维化的程度进而抑制AF的发生、发展。本实验发现,通过DHA干预可显著缩短AF持续时间,还可有效延长心房ERP、APD50及APD90,降低Ⅰ型、Ⅲ型胶原表达,与RAMADEEN等的结果一致,提示DHA可有效减轻AF大鼠心肌纤维化。

      MAPKs是细胞内的一类丝氨酸和(或)苏氨酸激酶,是细胞应激和炎症反应的主要信号通路,MAPK的活性受MKP负调控,MKP-1缺乏可导致应激反应中P38 MAPK通路活化增强[14]。在小鼠肌少症肥胖模型中发现,多不饱和脂肪酸对P38 MAPK信号通路所介导的骨骼肌细胞凋亡和细胞分化减少有保护作用[15]。相关研究[16]显示,多不饱和脂肪酸在保护心肌缺血再灌注损伤中具MAPK-1依赖性。有实验[17]证明,P38 MAPK的激活可显著增加AF的易感性。本实验发现,与CON组相比,DHA处理组P-P38表达明显下降,MKP-1表达明显增加(P<0.05);与AF组相比,DHA+AF组P-P38表达明显下降,MKP-1表达明显增加。心房肌组织P38 MAPK活性的逐渐增高与MKP-1表达相对下降呈显著负相关关系,这与文献[14]中报道的一致。本研究发现,在各组大鼠中,P-P38蛋白的表达与Ⅰ型、Ⅲ型胶原表达趋势一致,提示DHA不仅降低了P38的表达,还可降低Ⅰ型、Ⅲ型胶原表达,结合我们课题组前期研究[18],本实验中DHA可改善AF心房肌纤维化,其机制可能与激活P38 MAPK通路密切相关。

      值得注意的是,心房重构包括了结构重构和电重构,后者[19]主要指AF时节律快而不规则的心房激动造成的心房组织电生理特性的改变,常表现为ERP和APD一致性缩短。本实验中,与CON组大鼠相比,AF组大鼠ERP、APD50及APD90均表现为同步缩短,使用DHA干预后ERP、APD50及APD90均得到一致有效延长,提示DHA可能还发挥对抗AF大鼠的心房电重构作用,其具体作用机制有待下一步深入研究。关于P38 MAPK通路与DHA的摄入鲜有报道,本研究初步证明DHA具有抗心房纤维化作用,该作用的实现可能与P38 MAPK通路调控的胶原表达有关,将为AF病人临床治疗的研究提供新的方向,但具体机制仍需进一步探讨。

参考文献 (19)

目录

    /

    返回文章
    返回