-
2015年世界卫生组织统计，癌症是91个国家70岁前人群的主要死亡原因。全球癌症的发病率及死亡率呈迅速增长之态。目前全世界肺癌的发病率(11.6%)及死亡率(18.4%)均排第一位[1]，是对人群健康和生命威胁最大的恶性肿瘤。目前对中晚期肺癌治疗主要采取综合治疗，放疗是肺癌综合治疗中重要的治疗方法之一。在不同期别肺癌中均可应用放疗，但总体治疗效果较差，治疗失败主要原因是局部未控及远处转移。非小细胞肺癌尤其是腺癌对放疗不敏感，为提高放疗敏感性，放射增敏剂是有效解决该难题的重要方法之一。
研究[2-3]发现全反式维A酸(all-trans retinoic acid，ATRA)作为维生素A的主要代谢产物，主要参与调控细胞的增殖分化，诱导肿瘤细胞凋亡，是一种诱导分化剂。研究[4]发现ATRA能够增加胃癌细胞的凋亡及放射敏感性，可能与抑制细胞周期G2/M期的阻滞作用、下调Bcl-2与survivin mRNA表达、上调NF-κB与Bax mRNA表达有关。李明等[5]研究发现ATRA联合放疗具有协同诱导脑胶质瘤细胞凋亡的作用，其分子机制可能与凋亡相关基因p38及MAPK蛋白表达上调、NF-κB蛋白表达下调有关。本研究探讨ATRA对肺腺癌细胞株H1299放射敏感性的影响，为肺癌放射增敏提供依据。
-
肺腺癌H1299细胞购买于ATCC细胞库。RPMI 1640培养基、胎牛血清购自HyClone公司，ATRA、MTT试剂盒购自Sigma公司，细胞周期试剂盒及细胞凋亡检测试剂盒购自南京凯基生物科技发展有限公司，survivin、NF-κB、GAPDH抗体购自Anbo公司，辣根过氧化物酶标记山羊抗兔IgG购自北京中杉公司。
-
肺腺癌H1299细胞培养于含10%胎牛血清及双抗的RPMI 1640培养基中，置于37℃、5% CO2培养箱中培养。当细胞生长至80%融合时，加入0.25%胰蛋白酶消化进行传代，取对数生长期的细胞进行后续实验。
-
取对数生长期的H1299细胞，调整细胞密度为104/mL，接种于96孔板中，每孔200 μL，贴壁后，分别加入终浓度为0(对照组)、0.1、0.25、0.5、1.25、2.5、5、10 μmol/L的ATRA，每组6个复孔，继续培养24、48、72 h，加入20 μL MTT试剂，继续培养4 h，用酶联免疫检测仪测490 nm处检测吸光度(A)，细胞生长抑制率=(对照组A值-实验组A值)/对照组A值×100%。根据ATRA对H1299细胞增殖抑制的结果，选择合适的刺激浓度，考察ATRA联合射线照射和单独ATRA相比，抑制H1299细胞增殖的效果。
-
将处于对数生长期的H1299细胞，接种于60 mm的培养皿中，每皿约150个细胞的浓度，实验分2组：(1)放射组给予不同剂量X射线照射；(2)ATRA+放射组以10 μmol/L ATRA处理24 h后给予不同剂量X射线照射。使用6 mV的X线照射，照射剂量分别为0、2、4、6、8 Gy，将培养皿置于20 cm×20 cm照射野内，源皮距为100 cm。照射后，更换无药培养液继续培养14 d。用无水乙醇固定，结晶紫染色，计数克隆数及放射敏感性参数D0、Dq及N值。
-
实验分为4组：对照组、ATRA组(2 μmol/L)、2 Gy照射组及ATRA(2 μmol/L)+2 Gy照射组，将4组细胞处理后更换无药培养液培养24 h后制备单细胞悬液，细胞凋亡及细胞周期分分布情况，分别经AnnexinV-PE/7-AAD双染和PI单染后上机检测。
-
实验分3组：对照组、2 Gy照射组及ATRA(2 μmol/L)+2 Gy照射组，操作按文献[5]进行，用quantity one软件分析各组光密度值。蛋白相对表达量=目的蛋白光密度值/相应内参GAPDH光密度值。
-
采用t检验、方差分析和q检验。
-
不同浓度ATRA对肺腺癌H1299细胞均有抑制作用，浓度为10 μmol/L时最佳(P < 0.01)，72 h时其抑制率达到最大值(见表 1)。相对单独ATRA处理，10 μmol/L ATRA联合不同剂量的射线照射后，细胞生长抑制率明显增加(P < 0.01)(见表 2)。
分组 生长抑制率/% F P MS组内 24 h 48 h 72 h 对照组 101.52±2.09 102.17±3.15 102.89±1.76 0.24 >0.05 5.796 ATRA组/(μmol/L) 1.25 76.18±3.83** 70.27±4.32** 62.18±2.83**■■ 10.75 < 0.01 13.780 5 65.46±1.87**## 59.86±2.86**#■ 42.46±3.87**##■■△△ 48.57 < 0.01 8.884 10 58.54±3.04**##▲▲ 50.55±2.27**##▲■ 37.54±4.04**##■■△△ 32.92 < 0.01 10.239 F 134.18 144.48 249.97 — — — P < 0.01 < 0.01 < 0.01 — — — MS组内 7.944 10.479 10.601 — — — q检验：与对照组比较**P < 0.01；与ATRA 1.25 μmol/L组比较#P < 0.05，##P < 0.01；与ATRA 5 μmol/L组比较▲P < 0.05, ▲▲P < 0.01；与24 h比较■P < 0.05, ■■P < 0.01；与48 h比较△△P < 0.01 表 1 ATRA抑制H1299细胞生长(ni=6；x±s)
放射剂量/Gy 存活率/% t P 单纯放射组 10 μmol/L ATRA+放射组 0 0.87±0.03 0.75±0.03 4.90
< 0.014 0.47±0.07** 0.24±0.02** 5.47 < 0.01 8 0.10±0.02**## 0.02±0.002**## 6.89 < 0.01 10 0.04±0.008**##▲▲ 0.002±0.0006**##▲▲ 8.20 < 0.01 F 282.12 1 117.69 — — P < 0.01 < 0.01 — — MS组内 0.002 0.000
—— q检验：与0 Gy组比较**P < 0.01；与4 Gy组比较##P < 0.01；与8 Gy组比较▲▲P < 0.01 表 2 射线单独照射和10 μmol/L ATRA联合射线照射对H1299细胞存活的影响(ni=3；x±s)
-
ATRA作用和射线照射后的细胞凋亡增多(P < 0.01)，ATRA联合射线照射作用后的细胞总凋亡率明显高于单纯射线照射(P < 0.01)(见图 1、表 3)。
图 1 ATRA及ATRA联合射线照射诱导H1299细胞凋亡情况
分组 凋亡率/% 对照组 0 放射组 23.70±2.13 ATRA组 27.80±3.08* ATRA+放射组 43.56±2.76**##▲▲ F 54.59 P < 0.01 MS组内 5.426 q检验：与对照组比较*P < 0.05，**P < 0.01；与放射组比较##P < 0.01；与ATRA组比较▲▲P < 0.01 表 3 ATRA及ATRA联合射线照射诱导H1299细胞凋亡情况(ni=3；x±s)
-
与对照组、放射组、ATRA组相比，ATRA+放射组细胞G0/G1期比例明显增加(P < 0.01)(见表 4)。
分组 周期分布/% G0/G1 S G2/M 对照组 10.00±0.91 60.20±0.87 30.80±1.78 放射组 26.52±0.22** 39.27±3.17** 35.73±2.95# ATRA组 63.64±3.99**## 5.98±1.62**## 30.38±2.37 ATRA+放射组 42.30±1.98**##▲▲ 4.86±4.17**##▲▲ 52.81±2.19**##▲▲ F 302.93 283.39 59.79 P < 0.01 < 0.01 < 0.01 MS组内 5.179 7.705 5.571 q检验：与对照组比较**P < 0.01；与放射组比较##P < 0.01；与ATRA组比较▲▲P < 0.01 表 4 ATRA及ATRA联合射线照射对H1299细胞周期的影响(ni=3；x±s)
-
与放射组相比，ATRA+放射组的细胞存活分数(SF2)值降低，ATRA可以增加肺腺癌H1299细胞放射敏感性，增敏比为1.406(见表 5)。
分组 D0 /Gy Dq/Gy N SF2 k 增敏比 放射组 2.463 2.157 2.871 0.765 0.611 — ATRA+放射组 1.751 1.651 3.167 0.512 0.859 1.406 表 5 ATRA对H1299细胞放射敏感性影响
-
对照组、放射组、ATRA+放射组细胞中survivin与NF-κB的蛋白表达水平呈下降的趋势，且ATRP+放射组细胞中survivin与NF-κB的蛋白表达水平明显低于对照组和放射组(P < 0.01)(见图 2、表 6)。
图 2 各组H1299细胞中survivin与NF-κB的蛋白表达情况
分组 蛋白相对表达量 survivin NF-κB 对照组 1.12±0.05 1.00±0.06 放射组 0.64±0.08** 0.82±0.04* ATRA+放射组 0.31±0.03**## 0.57±0.08**## F 152.36 36.18 P < 0.01 < 0.01 MS组内 0.003 0.004 q检验：与对照组比较*P < 0.05，**P < 0.01；与放射组比较##P < 0.01 表 6 各组H1299细胞survivin与NF-κB的蛋白表达情况(ni=3；x±s)
-
放射治疗在肺癌的根治性和姑息性治疗中均起关键作用。在局部晚期[6]和早期[7]非小细胞肺癌中均得到证实。但肺癌总体预后较差，治疗失败主要原因局部未控及远处转移。在局部晚期非小细胞肺癌中经放射治疗后多数肿块无法完全消失，为提高肿瘤局部控制率, 近年来关于如何增加放射敏感性研究越来越多。
研究[8-10]发现ATRA可以促进肿瘤细胞凋亡、抑制肿瘤血管生成及转移，增加化疗药物敏感性[10]。王艳萍等[4]研究发现ATRA能够增加胃癌细胞SGC-7901的凋亡及放射敏感性，在肺腺癌H1299细胞中是否存在放射增敏作用，目前尚未发现相关研究结果。本研究通过MTT法、平板克隆形成实验、流式细胞术方法研究ATRA对肺腺癌H1299细胞存活率、放射敏感性、细胞周期的作用；同时应用Western blotting检测细胞中survivin与NF-κB的蛋白表达情况。结果显示，与放射组相比，ATRA+放射组细胞survivin与NF-κB蛋白表达被明显抑制。平板克隆形成实验也显示，ATRA+放射组的D0、Dq、N及SF2均明显低于放射组，表明放疗敏感性增强。细胞周期实验结果显示，与对照组、放射组、ATRA组相比，ATRA+放射组G0/G1期比例明显增加，与研究[11]结果相符。研究[12]发现survivin是凋亡抑制蛋白家族的新成员，具有肿瘤特异性，只表达于肿瘤和胚胎组织，且与肿瘤细胞的分化增殖及浸润转移密切相关。SANDUR等[13]研究发现在结直肠癌细胞中放疗增加NF-κB表达，出现放疗抵抗，加入姜黄素后NF-κB表达明显下降，放射敏感性明显增加。李晓波等[14]在肺癌细胞中也得到相同结果。李明等[5]应用替莫唑胺、ATRA联合放疗抗脑胶质瘤U251细胞研究发现，联合组细胞凋亡数明显增高，联合组与对照组、放疗组及药物组比较p38MAPK表达明显上调，联合组与对照组、放射组及药物组比较，NF-κB表达明显下调。本研究结果显示，与对照组及放射组相比，ATRA+放射组细胞中survivin与NF-κB的蛋白表达量均明显降低，提示ATRA可能通过下调survivin与NF-κB表达增加H1299细胞放射敏感性。
综上所述，ATRA对肺腺癌H1299细胞具有放射增敏作用，其机制可能与ATRA直接抑制H1299细胞增殖、促进H1299细胞凋亡，下调survivin及NF-κB蛋白表达有关。
全反式维A酸对肺腺癌H1299细胞放射敏感性研究
Effect of all-trans retinoic acid on radiosensitivity of lung adenocarcinoma H1299 cells
-
摘要:
目的探讨全反式维A酸（ATRA）对肺腺癌细胞株H1299放射敏感性影响及其分子机制。 方法MTT法检测ATRA对H1299细胞存活率的影响；平板克隆形成实验检测H1299细胞的放射敏感性；流式细胞术检测细胞周期；Western blotting检测survivin与NF-κB的蛋白表达情况。 结果不同浓度ATRA对H1299细胞均有抑制作用，浓度为10 μmol/L时最佳（P < 0.05）。相对单独ATRA处理，10 μmol/L ATRA联合不同剂量的射线照射后，细胞生长抑制率明显增加（P < 0.01）。ATRA作用和射线照射后的细胞凋亡增多（P < 0.01），ATRA联合射线照射作用后的细胞总凋亡率明显高于单纯射线照射（P < 0.01）。与对照组、放射组、ATRA组相比，ATRA+放射组G0/G1期比例明显增加（P < 0.01）。与放射组相比，ATRA+放射组的细胞存活分数值降低，ATRA可以增加肺腺癌H1299细胞放射敏感性，增敏比为1.406。Western blotting结果显示，ATRA+放射组细胞survivin、NF-κB蛋白表达明显降低（P < 0.01）。 结论ATRA对肺腺癌H1299细胞具有放射增敏作用，其机制可能与ATRA直接抑制H1299细胞增殖、促进H1299细胞凋亡，下调survivin及NF-κB蛋白表达有关。 Abstract:ObjectiveTo investigate the effects of all-trans retinoic acid(ATRA) on the radiosensitivity of lung adenocarcinoma cell line H1299, and explore its possible molecular mechanisms. MethodsMTT assay was used to determine the effects of ATRA on the survival rate of H1299 cells, the radiosensitivity of H1299 cells was detected using plate cloning formation experiment, the H1299 cell cycle was detected using flow cytometry and the protein expression levels of survivin and NF-κB in the cells were detected using Western blotting. ResultsThe H1299 cells could be inhibited by ATRA at different concentrations, and the best concentration of which was 10 μmol/L(P < 0.05).Compared with the cells treated with ATRA alone, 10 μmol/L ATRA combined with different doses of radiation, the inhibition rate of cell growth significantly increased(P < 0.01), the number of cell apoptosiss increased(P < 0.01), and the total apoptosis rate of ATRA combined with radiation was significantly higher than that of ATRA alone(P < 0.01).Compared with the control group, radiation group, and ATRA group, the proportion of G0/G1 phase in ATRA combined with radiation group significantly increased(P < 0.01).Compared with the radiation group, the cell survival fraction in ATRA combined with radiation group decreased, and ATRA could increase the radiosensitivity of lung adenocarcinoma H1299 cells with a sensitization ratio of 1.406.The results of Western blotting showed that the expression levels of survivin and NF-κB in H1299 cells significantly decreased in ATRA combined with radiation group(P < 0.01). ConclusionsATRA can increase the radiosensitivity of lung adenocarcinoma H1299 cells, and the mechanism may be related to ATRA directly inhibiting the proliferation of H1299 cells, promoting the apoptosis of H1299 cells and down-regulating the survivin protein and NF-κB protein expression. -
Key words:
- lung neoplasms /
- all-trans retinoic acid /
- radiosensitivity
-
表 1 ATRA抑制H1299细胞生长(ni=6；x±s)
分组 生长抑制率/% F P MS组内 24 h 48 h 72 h 对照组 101.52±2.09 102.17±3.15 102.89±1.76 0.24 >0.05 5.796 ATRA组/(μmol/L) 1.25 76.18±3.83** 70.27±4.32** 62.18±2.83**■■ 10.75 < 0.01 13.780 5 65.46±1.87**## 59.86±2.86**#■ 42.46±3.87**##■■△△ 48.57 < 0.01 8.884 10 58.54±3.04**##▲▲ 50.55±2.27**##▲■ 37.54±4.04**##■■△△ 32.92 < 0.01 10.239 F 134.18 144.48 249.97 — — — P < 0.01 < 0.01 < 0.01 — — — MS组内 7.944 10.479 10.601 — — — q检验：与对照组比较**P < 0.01；与ATRA 1.25 μmol/L组比较#P < 0.05，##P < 0.01；与ATRA 5 μmol/L组比较▲P < 0.05, ▲▲P < 0.01；与24 h比较■P < 0.05, ■■P < 0.01；与48 h比较△△P < 0.01 
下载: 导出CSV
表 2 射线单独照射和10 μmol/L ATRA联合射线照射对H1299细胞存活的影响(ni=3；x±s)
放射剂量/Gy 存活率/% t P 单纯放射组 10 μmol/L ATRA+放射组 0 0.87±0.03 0.75±0.03 4.90
< 0.014 0.47±0.07** 0.24±0.02** 5.47 < 0.01 8 0.10±0.02**## 0.02±0.002**## 6.89 < 0.01 10 0.04±0.008**##▲▲ 0.002±0.0006**##▲▲ 8.20 < 0.01 F 282.12 1 117.69 — — P < 0.01 < 0.01 — — MS组内 0.002 0.000
—— q检验：与0 Gy组比较**P < 0.01；与4 Gy组比较##P < 0.01；与8 Gy组比较▲▲P < 0.01
下载: 导出CSV
表 3 ATRA及ATRA联合射线照射诱导H1299细胞凋亡情况(ni=3；x±s)
分组 凋亡率/% 对照组 0 放射组 23.70±2.13 ATRA组 27.80±3.08* ATRA+放射组 43.56±2.76**##▲▲ F 54.59 P < 0.01 MS组内 5.426 q检验：与对照组比较*P < 0.05，**P < 0.01；与放射组比较##P < 0.01；与ATRA组比较▲▲P < 0.01
下载: 导出CSV
表 4 ATRA及ATRA联合射线照射对H1299细胞周期的影响(ni=3；x±s)
分组 周期分布/% G0/G1 S G2/M 对照组 10.00±0.91 60.20±0.87 30.80±1.78 放射组 26.52±0.22** 39.27±3.17** 35.73±2.95# ATRA组 63.64±3.99**## 5.98±1.62**## 30.38±2.37 ATRA+放射组 42.30±1.98**##▲▲ 4.86±4.17**##▲▲ 52.81±2.19**##▲▲ F 302.93 283.39 59.79 P < 0.01 < 0.01 < 0.01 MS组内 5.179 7.705 5.571 q检验：与对照组比较**P < 0.01；与放射组比较##P < 0.01；与ATRA组比较▲▲P < 0.01
下载: 导出CSV
表 5 ATRA对H1299细胞放射敏感性影响
分组 D0 /Gy Dq/Gy N SF2 k 增敏比 放射组 2.463 2.157 2.871 0.765 0.611 — ATRA+放射组 1.751 1.651 3.167 0.512 0.859 1.406
下载: 导出CSV
表 6 各组H1299细胞survivin与NF-κB的蛋白表达情况(ni=3；x±s)
分组 蛋白相对表达量 survivin NF-κB 对照组 1.12±0.05 1.00±0.06 放射组 0.64±0.08** 0.82±0.04* ATRA+放射组 0.31±0.03**## 0.57±0.08**## F 152.36 36.18 P < 0.01 < 0.01 MS组内 0.003 0.004 q检验：与对照组比较*P < 0.05，**P < 0.01；与放射组比较##P < 0.01
下载: 导出CSV
-
[1] BRAY F, FERLAY J, SOERJOMATARAM L, et al. Global cancer statistics 2018: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries[J]. CA Cancer J Clin, 2018, 68(6): 394. doi: 10.3322/caac.21492 [2] URAY IP, DMITROVSKY E, BROWN PH. Retinoids and rexinoids in cancer prevention: from laboratory to clinic[J]. Semin Oncol, 2016;43(1): 49. doi: 10.1053/j.seminoncol.2015.09.002 [3] LU TY, LI WC, CHEN RY, et al. Inhibition effects of all trans-retinoic acid on the growth and angiogenesis of esophageal squamous cell carcinoma in nude mice[J]. Chin Med J(Engl), 2011, 124(17): 2708. [4] 王艳萍, 赵先群, 张向东, 等. 全反式维甲酸增加胃癌细胞对放射的敏感性[J]. 中国病理生理杂志, 2016, 32(8): 1440. [5] 李明, 李毅平, 时敬国. 替莫唑胺、全反式维甲酸联合放疗抗脑胶质瘤的研究[J]. 中华实验外科杂志, 2018, 35(2): 261. doi: 10.3760/cma.j.issn.1001-9030.2018.02.020 [6] EBERHARDT WE, DE RUYSSCHER D, WEDER W, et al. 2nd ESMO consensus conference in lung cancer: locally advanced stage Ⅲ non-small-cell lung cancer[J]. Ann Oncol, 2015, 26(8): 1573. doi: 10.1093/annonc/mdv187 [7] VANSTEENKISTE J, DE RUYSSCHER D, EBERHARDT WEE, et al. Early and locally advanced non-small-cell lung cancer(NSCLC): ESMO clinical practice guidelines for diagnosis, treatment and follow-up[J]. Ann Oncol, 2013, 24(Suppl 6): vi89. doi: 10.1093/annonc/mdt241 [8] MEI D, LV B, CHEN B, XIAO S, et al. All-trans retinoic acid suppresses malignant characteristics of CD133-positive thyroid cancer stem cells and induces apoptosis[J]. PLoS One, 2017, 12(8): e0182835. doi: 10.1371/journal.pone.0182835 [9] LI N, LU Y, LI D, et al. All-trans retinoic acid suppresses the angiopoietin-Tie2 pathway and inhibits angiogenesis and metastasis in esophageal squamous cell carcinoma[J]. PLoS One, 2017, 12(4): e0174555. doi: 10.1371/journal.pone.0174555 [10] SHI J, SUN J, LIU C, et al. All-trans-retinoic acid(ATRA) plus oxaliplatin plus 5-fluorouracil/leucovorin(FOLFOX) versus FOLFOX alone as palliative chemotherapy in patients with advanced hepatocellular carcinoma and extrahepatic metastasis: study protocol for a randomized controlled trial[J]. Trials, 2019, 20(1): 245. doi: 10.1186/s13063-019-3349-9 [11] SCHNEIDER SM, OFFTERDINGER M, HUBER H, et al. Activation of retinoic acid receptor α is sufficient for full induction of retinoid responses in SK-BR-3 and T47D human breast cancer cells[J]. Cancer Res, 2000, 60(19): 5479. [12] WHEATLEY SP, ALTIERI DC. Survivin at a glance[J]. J Cell Sci, 2019, 132(7): jcs223826. doi: 10.1242/jcs.223826 [13] SANDUR SK, DEORUKHKAR A, PANDEY MK, et al. Curcumin modulates the radiosensitivity of colorectal cancer cells by suppressing constitutive and inducible NF-κB activity[J]. Int J Radiat Oncol Biol Phys, 2009, 75(2): 534. doi: 10.1016/j.ijrobp.2009.06.034 [14] 李晓波, 徐芳. 姜黄素通过影响NF-κB信号通路促进肺癌细胞的放射敏感性[J]. 重庆医学, 2017, 46(6): 749. -
点击查看大图
图(2)表(6)
计量
- 文章访问数: 3398
- HTML全文浏览量: 2069
- PDF下载量: 48
- 被引次数: 0
