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白藜芦醇诱导大肠癌SW480细胞发生铁死亡及机制研究

杨艳华 张自雄

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白藜芦醇诱导大肠癌SW480细胞发生铁死亡及机制研究

    作者简介: 杨艳华(1979-),女,硕士,副主任医师
    通讯作者: 张自雄, 596099670@qq.com
  • 基金项目:

    湖北省卫生健康委指导性科研项目 WJ2021F090

  • 中图分类号: R735.3

Resveratrol induces ferroptosis in colorectal cancer SW480 cells and its mechanism

    Corresponding author: ZHANG Zi-xiong, 596099670@qq.com
  • CLC number: R735.3

  • 摘要: 目的研究白藜芦醇对大肠癌SW480细胞铁死亡的激活,并探讨其可能的作用机制。方法利用不同剂量白藜芦醇(0、10、20、40、80、160 μmol/L)干预SW480细胞24、48、72 h后,CCK8法分析白藜芦醇对细胞增殖抑制率的影响;不同剂量白藜芦醇(0、20、40、80 μmol/L)干预SW480细胞48 h后,采用蛋白质印迹法分析谷胱甘肽过氧化物酶4(GPX4)、胱氨酸-谷氨酸反向转运体亚基xCT蛋白及二价金属离子转运体1(DMT1)的表达水平,流式细胞仪分析细胞内荧光强度用于监测活性氧(ROS)含量的变化。结果白藜芦醇处理SW480细胞后,细胞增殖抑制率明显升高,表现出时间和浓度依赖性(P < 0.05);白藜芦醇能够显著抑制细胞内xCT、GPX4蛋白表达,促使DMT1蛋白表达(P < 0.05);还能诱导SW480细胞内ROS的积累(P < 0.05)。结论白藜芦醇通过抑制xCT、GPX4蛋白表达使SW480细胞中ROS大量累积,细胞发生铁死亡,DMT1的激活可能是其机制之一。
  • 图 1  xCT、GPX4蛋白电泳图

    图 2  ROS流式细胞图

    图 3  DMT1蛋白电泳图

    表 1  各组间SW480细胞增殖抑制率的比较(n=5)

    分组/(μmol/L) 24 h 48 h 72 h F P MS组内
    0
    10 5.4±1.7 12.3±2.5 22.6±3.7▽△ 49.23 < 0.01 7.610
    20 8.6±3.1 21.7±2.9**▽ 42.4±4.2**▽△ 122.16 < 0.01 11.886
    40 21.3±3.3**## 36.9±3.2**##▽ 49.8±3.4**##▽△ 93.46 < 0.01 10.896
    80 34.2±2.8**##▼▼ 47.6±3.8**##▼▼▽ 71.2±4.3**##▼▼▽△ 129.11 < 0.01 13.590
    160 41.2±3.8**##▼▼▲▲ 52.7±4.1**##▼▼▲ 88.3±5.1**##▼▼▲▲ 157.96 < 0.01 19.086
    F 133.16 129.67 186.43
    P < 0.01 < 0.01 < 0.01
    MS组内 9.134 11.230 17.478
    q检验:与10 μmol/L比较**P < 0.01;与20 μmol/L比较##P < 0.01;与40 μmol/L比较▼▼P < 0.01;与80 μmol/L比较▲P < 0.05,▲▲P < 0.01;组内比较:与24 h比较▽P < 0.01,与48 h比较△P < 0.01
    下载: 导出CSV

    表 2  各组间xCT、GPX4蛋白表达的比较(n=5)

    分组 xCT/β-actin GPX4/β-actin
    对照组 0.47±0.03 0.24±0.03
    20 μmol/L白藜芦醇 0.27±0.04** 0.17±0.02**
    40 μmol/L白藜芦醇 0.17±0.02**## 0.13±0.03**#
    80 μmol/L白藜芦醇 0.13±0.03**## 0.09±0.02**##
    F 121.40 31.47
    P < 0.01 < 0.01
    MS组内 0.001 0.001
    q检验:与对照组比较**P < 0.01;与20 μmol/L白藜芦醇比较#P < 0.05,##P < 0.01;与40 μmol/L白藜芦醇比较▼P < 0.05
    下载: 导出CSV

    表 3  各组间ROS累积、DMT1蛋白表达(n=5)

    分组 ROS GPX4/β-actin
    对照组 1104.3±342.7 0.07±0.02
    20 μmol/L白藜芦醇 2453.1±546.5** 0.13±0.03*
    40 μmol/L白藜芦醇 3890.4±657.2**## 0.24±0.04**##
    80 μmol/L白藜芦醇 4416.7±547.3**## 0.39±0.04**##▼▼
    F 38.85 87.81
    P < 0.01 < 0.01
    MS组内 286 888.667 5 0.001
    q检验:与对照组比较*P < 0.05,**P < 0.01;与20 μmol/L白藜芦醇比较##P < 0.01;与40 μmol/L白藜芦醇比较▼▼P < 0.01
    下载: 导出CSV
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出版历程
  • 收稿日期:  2019-02-20
  • 录用日期:  2020-10-22
  • 刊出日期:  2022-03-15

白藜芦醇诱导大肠癌SW480细胞发生铁死亡及机制研究

    通讯作者: 张自雄, 596099670@qq.com
    作者简介: 杨艳华(1979-),女,硕士,副主任医师
  • 1. 湖北省恩施土家族苗族自治州中心医院 消化内科,445000
  • 2. 湖北省恩施土家族苗族自治州中心医院 科教部,445000
基金项目:  湖北省卫生健康委指导性科研项目 WJ2021F090

摘要: 目的研究白藜芦醇对大肠癌SW480细胞铁死亡的激活,并探讨其可能的作用机制。方法利用不同剂量白藜芦醇(0、10、20、40、80、160 μmol/L)干预SW480细胞24、48、72 h后,CCK8法分析白藜芦醇对细胞增殖抑制率的影响;不同剂量白藜芦醇(0、20、40、80 μmol/L)干预SW480细胞48 h后,采用蛋白质印迹法分析谷胱甘肽过氧化物酶4(GPX4)、胱氨酸-谷氨酸反向转运体亚基xCT蛋白及二价金属离子转运体1(DMT1)的表达水平,流式细胞仪分析细胞内荧光强度用于监测活性氧(ROS)含量的变化。结果白藜芦醇处理SW480细胞后,细胞增殖抑制率明显升高,表现出时间和浓度依赖性(P < 0.05);白藜芦醇能够显著抑制细胞内xCT、GPX4蛋白表达,促使DMT1蛋白表达(P < 0.05);还能诱导SW480细胞内ROS的积累(P < 0.05)。结论白藜芦醇通过抑制xCT、GPX4蛋白表达使SW480细胞中ROS大量累积,细胞发生铁死亡,DMT1的激活可能是其机制之一。

English Abstract

  • 大肠癌是消化道常见的恶性肿瘤,其发病率及致死率较高,位于肿瘤疾病中的第4~5位[1-2]。随着物质生活水平的提升,人们生活环境、生活节奏及饮食习惯的改变,大肠癌的发病人数每年呈上升趋势[3]。尽管医疗水平不断提高,可应用放、化疗及免疫法等手段进行干预,但是大肠癌5年的生存率仍然较低[4]。对大肠癌发生机制进行深入探讨,对于大肠癌的早期治疗具有重大作用。寻找一种有效的大肠癌治疗药物是目前研究的热点。铁死亡是一种铁离子依赖的过氧化反应引起的细胞死亡模式,和凋亡、坏死及自噬等细胞死亡模式相比,在细胞形态学、生物学及遗传学等方面有较大区别[5]。早期报道[5-6]显示,铁死亡是因为胱氨酸-谷氨酸反向转运体亚基xCT蛋白表达降低时,胱氨酸的摄取减少,导致谷胱甘肽过氧化物酶4(GPX4)表达下降,进而引发细胞内活性氧(ROS)过度堆积导致的细胞死亡,这一生物学过程需要铁离子的参与。研究[7]发现,铁死亡与肿瘤发生发展的病理过程相关。

    白藜芦醇是多酚类化合物。主要来源于花生、葡萄(红葡萄酒)、虎杖、桑椹等植物。白藜芦醇是一种生物性很强的天然多酚类物质是肿瘤的化学预防剂,也是降低血小板聚集、预防和治疗动脉粥样硬化、心脑血管疾病的化学预防剂[8-9];王晓燕等[10]发现白藜芦醇能通过下调人端粒酶逆转录酶(hTERT)启动子活性来抑制大肠癌细胞的增殖。然而,白藜芦醇是否能诱导大肠癌细胞铁死亡,尚未见报道。本研究以大肠癌SW480细胞株为体外研究对象,观察白藜芦醇通过抑制xCT、GPX4表达,诱导ROS过度堆积促使大肠癌细胞的铁死亡。

    • 大肠癌细胞株SW480购自中科院上海细胞库;白藜芦醇(美国Sigma公司);DMEM培养基(Thermo公司);胎牛血清(杭州四季青公司);CCK-8试剂盒(上海纪宁公司);BCA蛋白浓度测定试剂盒(上海谷歌生物有限公司);ROS检测试剂盒均购自碧云天生物技术研究所;xCT、GPX4、二价金属离子转运体1(DMT1)及β-actin抗体购自英国Abcam公司。单人超净工作台(北京六一仪器厂);BC-J80S型CO2细胞培养箱(北京六一仪器厂);Victor3 1420 Multilable Counter酶标仪(美国BD,FACS AriaⅢ);HD-3000型凝胶成像仪(上海上天精密仪器有限公司);Millipore流式细胞仪(北京维欣仪奥科技发展有限公司)。

    • SW480细胞培养于10%胎牛血清的DMEM培养基中,条件为37 ℃、5%CO2、饱和湿度环境,等细胞贴壁生长后,进行常规培养并传代。每2 d换液1次,每天监测细胞形态变化。

    • 取对数期SW480细胞消化、重悬、调整细胞密度后接种于96孔板,置于37 ℃、5%CO2培养箱中培养过夜。然后加入不同浓度(0、10、20、40、80、160 μmol/L)白藜芦醇处理细胞24、48、72 h后,除去旧培养液,每孔加入10 μL CCK8溶液,每组设置6个复孔,再置于培养箱中孵育2 h后,置于酶标仪中测定450 nm处的吸光度(OD)值。细胞抑制率(%)=[(1-实验组OD值)/对照组OD值]×100%。

    • 取对数期SW480细胞消化、重悬、调整细胞密度后接种于6孔板,置于37 ℃恒温、5%CO2培养箱中培养过夜。然后加入不同浓度(0、20、40、80 μmol/L)白藜芦醇处理细胞48 h后,收集各组SW480细胞,冰上充分裂解30 min,在4 ℃、12 000 r/min低温离心机中离心15 min,然后吸取上清测蛋白浓度。细胞匀浆采用10%SDS-PAGE电泳4 h(电压45 V),随后转膜,5%脱脂牛奶封闭1 h。把条带对应放入xCT、GPX4、DMT1及β-actin抗体溶液中(稀释比1∶1 000),4 ℃反应过夜。TBST洗膜3次,每次10 min,然后室温条件下孵育二抗1 h。TBST洗膜3次,每次10 min,ECL显色后,成像系统进行曝光显影,Image J软件分析蛋白灰度值。

    • 取对数期SW480细胞消化、重悬、调整细胞密度后接种于6 cm培养皿中,置于37 ℃、5%CO2培养箱中培养过夜。然后加入不同浓度(0、20、40、80 μmol/L)白藜芦醇处理细胞48 h后,除去培养液,加入1 mL终浓度为10 μmol/L的2′, 7′-二氯荧光黄双乙酸盐(DCFH-DA)探针工作液,置于37 ℃培养箱中孵育20 min。采用无血清细胞培养液洗涤3遍,采用不含EDTA的胰蛋白酶消化细胞,上流式细胞仪检测细胞中荧光强度(激发波长为488 nm,发射波长为525 nm)。

    • 采用t检验、q检验和方差分析。

    • 10 μmol/L白藜芦醇对SW480细胞增殖就表现出抑制作用,随着药物浓度的增高,细胞增殖抑制率数值也随之升高。同时,同一浓度白藜芦醇作用不同时间SW480细胞后,随着作用时间的延长,细胞增殖受到抑制的效果更为明显(P < 0.01)(见表 1)。

      分组/(μmol/L) 24 h 48 h 72 h F P MS组内
      0
      10 5.4±1.7 12.3±2.5 22.6±3.7▽△ 49.23 < 0.01 7.610
      20 8.6±3.1 21.7±2.9**▽ 42.4±4.2**▽△ 122.16 < 0.01 11.886
      40 21.3±3.3**## 36.9±3.2**##▽ 49.8±3.4**##▽△ 93.46 < 0.01 10.896
      80 34.2±2.8**##▼▼ 47.6±3.8**##▼▼▽ 71.2±4.3**##▼▼▽△ 129.11 < 0.01 13.590
      160 41.2±3.8**##▼▼▲▲ 52.7±4.1**##▼▼▲ 88.3±5.1**##▼▼▲▲ 157.96 < 0.01 19.086
      F 133.16 129.67 186.43
      P < 0.01 < 0.01 < 0.01
      MS组内 9.134 11.230 17.478
      q检验:与10 μmol/L比较**P < 0.01;与20 μmol/L比较##P < 0.01;与40 μmol/L比较▼▼P < 0.01;与80 μmol/L比较▲P < 0.05,▲▲P < 0.01;组内比较:与24 h比较▽P < 0.01,与48 h比较△P < 0.01

      表 1  各组间SW480细胞增殖抑制率的比较(n=5)

    • 20、40、80 μmol/L白藜芦醇作用SW480细胞48 h后,细胞中GPX4和xCT蛋白表达相对于对照组细胞明显降低(P < 0.01)。低、中、高剂量白藜芦醇组间细胞中GPX4和xCT蛋白表达也有明显差异(P < 0.01),表现出浓度依赖性(见图 1表 2)。

      图  1  xCT、GPX4蛋白电泳图

      分组 xCT/β-actin GPX4/β-actin
      对照组 0.47±0.03 0.24±0.03
      20 μmol/L白藜芦醇 0.27±0.04** 0.17±0.02**
      40 μmol/L白藜芦醇 0.17±0.02**## 0.13±0.03**#
      80 μmol/L白藜芦醇 0.13±0.03**## 0.09±0.02**##
      F 121.40 31.47
      P < 0.01 < 0.01
      MS组内 0.001 0.001
      q检验:与对照组比较**P < 0.01;与20 μmol/L白藜芦醇比较#P < 0.05,##P < 0.01;与40 μmol/L白藜芦醇比较▼P < 0.05

      表 2  各组间xCT、GPX4蛋白表达的比较(n=5)

    • 结果表明, 不同剂量白藜芦醇(20、40、80 μmol/L)干预细胞48 h后,与对照组相比,药物组SW480细胞中产生了大量ROS(P < 0.01),DMT1蛋白表达相对于对照组细胞明显升高(P < 0.01);低、中、高剂量白藜芦醇组间细胞中ROS积累量及DMT1蛋白表达差异有统计学意义(P < 0.01),表现出浓度依赖性(见图 2~3表 3)。

      图  2  ROS流式细胞图

      图  3  DMT1蛋白电泳图

      分组 ROS GPX4/β-actin
      对照组 1104.3±342.7 0.07±0.02
      20 μmol/L白藜芦醇 2453.1±546.5** 0.13±0.03*
      40 μmol/L白藜芦醇 3890.4±657.2**## 0.24±0.04**##
      80 μmol/L白藜芦醇 4416.7±547.3**## 0.39±0.04**##▼▼
      F 38.85 87.81
      P < 0.01 < 0.01
      MS组内 286 888.667 5 0.001
      q检验:与对照组比较*P < 0.05,**P < 0.01;与20 μmol/L白藜芦醇比较##P < 0.01;与40 μmol/L白藜芦醇比较▼▼P < 0.01

      表 3  各组间ROS累积、DMT1蛋白表达(n=5)

    • 铁死亡属于一种新型的铁离子依赖性细胞死亡方式,与早期报道[5]的细胞坏死和凋亡等模型有着明显不同。铁死亡对于机体来说是一把“双刃剑”,即其发生在正常细胞中,会因为ROS的过度积累引发多种病症。中枢神经系统疾病中,发现铁死亡是帕金森病中多种细胞死亡方式的一种,在这过程中GPX4发挥着重要的作用[11]。在肿瘤方面,发现顺铂可以引起癌细胞发生铁死亡,其中xCT和GPX4的表达水平发生了显著变化[12]。于是,在肿瘤细胞中能够诱导铁死亡可能成为肿瘤治疗的一个新方案。

      目前,已有研究[13]发现多种药物均可诱导肿瘤细胞发生铁死亡。青蒿琥酯在胰腺癌细胞中可诱导铁死亡的发生;双氢青蒿素也能引发头颈部鳞状细胞癌发生铁死亡[14];另外,索拉菲尼在治疗肝癌过程中也发现铁死亡的存在[15]。白藜芦醇在抗肿瘤等方面效果显著,并且对大肠癌细胞增殖具有明显的抑制作用[10]。本文研究也发现白藜芦醇对大肠癌SW480细胞增殖表现出时间、剂量依赖性的抑制作用。随着白藜芦醇剂量的增高,SW480细胞中xCT和GPX4蛋白的表达水平逐渐降低。此外,用流式细胞法检测了不同剂量白藜芦醇处理后SW480细胞中ROS的含量。实验结果发现白藜芦醇处理后SW480细胞中ROS含量显著升高。上述结果充分证实白藜芦醇能诱导SW480细胞发生铁死亡。

      细胞发生铁死亡与细胞内铁离子的富集关系密切,DMT1与Cu2+和Fe2+等二价金属离子的转运有一定联系[16]。然而铁死亡本身是因为胞内铁离子的富集导致ROS的过度堆积而引发的细胞死亡。由此不难得出DMT1在细胞铁死亡过程中发挥了重要的作用。为了进一步证实白藜芦醇引发铁死亡的机制是否与DMT1表达有关,实验中对SW480细胞中DMT1蛋白表达水平进行了进一步检测。发现SW480细胞经白藜芦醇处理后,DMT1蛋白表达水平明显升高。总之,本研究发现白藜芦醇早大肠癌SW480细胞中诱导铁死亡,其机制可能与DMT1蛋白表达水平升高有关。

参考文献 (16)

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